| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 缩略词表(Abbreviations) | 第8-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-27页 |
| 1.1 原始卵泡形成的基本过程 | 第10-13页 |
| 1.2 调控原始卵泡形成的机制 | 第13-21页 |
| 1.3 Rac1的结构与功能调节 | 第21-26页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第26-27页 |
| 第二章 材料方法 | 第27-49页 |
| 2.1 实验动物 | 第27页 |
| 2.2 主要仪器及试剂配制 | 第27-32页 |
| 2.3 小鼠卵巢的分离与体外培养 | 第32-33页 |
| 2.4 小鼠卵母细胞及卵泡计数 | 第33页 |
| 2.5 Realtime-PCR和普通PCR | 第33-37页 |
| 2.6 免疫组织化学(Immunohistochemistry,IHC) | 第37-38页 |
| 2.7 蛋白免疫印迹(Western blot,WB) | 第38-40页 |
| 2.8 载体构建 | 第40-41页 |
| 2.9 RNA干扰与基因过表达 | 第41页 |
| 2.10 小鼠皮下注射 | 第41-42页 |
| 2.11 细胞增殖检测 | 第42页 |
| 2.12 TUNEL原位凋亡检测 | 第42页 |
| 2.13 免疫共沉淀 | 第42-43页 |
| 2.14 细胞的培养和转染 | 第43-44页 |
| 2.15 染色质免疫共沉淀(Chromatin immunoprecipitation,ChIP) | 第44-46页 |
| 2.16 双荧光素酶报告基因检测 | 第46-47页 |
| 2.17 Pull down实验 | 第47-48页 |
| 2.18 统计分析 | 第48-49页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第49-73页 |
| 3.1 Rac1在围产期小鼠卵巢中的表达定位 | 第49-50页 |
| 3.2 围产期小鼠卵巢中Rac1 mRNA与蛋白表达量的变化 | 第50-51页 |
| 3.3 抑制Rac1阻碍合胞体的破裂与原始卵泡的形成 | 第51-53页 |
| 3.4 敲降Rac1制原始卵泡的形成 | 第53-55页 |
| 3.5 过表达Rac1原始卵泡的形成加速 | 第55页 |
| 3.6 在体抑制Rac1的活性阻碍原始卵泡的形成导致多卵子卵泡的发生 | 第55-56页 |
| 3.7 抑制Rac1活性显著抑制卵巢前体颗粒细胞的增殖并且促进其凋亡 | 第56-58页 |
| 3.8 Rac1通过调节原始卵泡形成必需基因的表达影响原始卵泡的形成 | 第58-60页 |
| 3.9 Rac1在生殖细胞中通过转录因子STAT3调控必要基因的转录 | 第60-63页 |
| 3.10 STAT3直接结合于生殖细胞必要基因的启动子上激活转录 | 第63-65页 |
| 3.11 Rac1通过直接结合诱导了STAT3的入核 | 第65-66页 |
| 3.12 GDF9和BMP15通过激活前体颗粒细胞中的mTORC1促进Notch2转录 | 第66-69页 |
| 3.13 Jagged1、GDF9和BMP15加速原始卵泡的形成 | 第69-73页 |
| 第四章 讨论与分析 | 第73-76页 |
| 第五章 结论与展望 | 第76-77页 |
| 5.1 结论 | 第76页 |
| 5.2 展望 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-89页 |
| 附录1 SIRT1在小鼠原始卵泡始动募集中的作用及机制 | 第89-104页 |
| 1. 前言 | 第89-91页 |
| 2. 材料与方法 | 第91-93页 |
| 3. 结果 | 第93-99页 |
| 4. 讨论 | 第99-100页 |
| 5. 结论 | 第100-101页 |
| 6. 展望 | 第101页 |
| 7. 参考文献 | 第101-104页 |
| 附录2 实验所用一抗信息 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 作者简历 | 第106页 |
