| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 1 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 目的基因分子标记技术的类型及其应用 | 第11-15页 |
| 1.1.1 基于保守DNA和保守基因家族的分子标记 | 第11-12页 |
| 1.1.2 基于转座因子的分子标记 | 第12-13页 |
| 1.1.3 基于抗性基因的分子标记 | 第13页 |
| 1.1.4 基于RNA的分子标记 | 第13-14页 |
| 1.1.5 目标指纹识别标记 | 第14-15页 |
| 1.2 CDDP标记技术及其在植物中的应用 | 第15-17页 |
| 1.2.1 CDDP标记的技术流程 | 第15-16页 |
| 1.2.2 CDDP标记在植物研究中的应用 | 第16-17页 |
| 1.3 越橘品种分类及分子标记在越橘种质资源研究中的应用 | 第17-20页 |
| 1.3.1 越橘种质分类 | 第17-19页 |
| 1.3.2 我国越橘种质资源及研究现状 | 第19-20页 |
| 1.3.3 分子标记在越橘种质资源研究中的应用 | 第20页 |
| 1.4 本研究的背景及目的、意义 | 第20-23页 |
| 1.4.1 研究背景 | 第20-21页 |
| 1.4.2 本研究的目的、意义 | 第21-22页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第22-23页 |
| 2 CDDP-PCR体系的建立与优化 | 第23-34页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第23-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 CTAB法提取越橘叶片基因组DNA | 第25页 |
| 2.2.2 越橘基因组DNA质量检测 | 第25-26页 |
| 2.2.3 PCR扩增程序 | 第26页 |
| 2.2.4 PCR反应体系优化 | 第26页 |
| 2.2.5 扩增产物的电泳及检测 | 第26-27页 |
| 2.3 结果与分析 | 第27-32页 |
| 2.3.1 提取的越橘基因组DNA质量分析 | 第27-28页 |
| 2.3.2 CDDP-PCR反应体系优化及验证结果 | 第28-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-33页 |
| 2.5 小结 | 第33-34页 |
| 3 基于CDDP标记的越橘种质遗传多样性分析 | 第34-44页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第34页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第34页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 DNA提取与检测 | 第34页 |
| 3.2.2 CDDP标记引物筛选 | 第34-36页 |
| 3.2.3 越橘材料的CDDP-PCR扩增 | 第36页 |
| 3.2.4 条带统计与数据分析 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与分析 | 第37-42页 |
| 3.3.1 CDDP标记引物的筛选及多态性分析 | 第37-39页 |
| 3.3.2 越橘材料的遗传多样性分析及品种鉴别 | 第39页 |
| 3.3.3 越橘材料的聚类分析 | 第39-42页 |
| 3.4 讨论 | 第42-43页 |
| 3.4.1 CDDP标记用于越橘种质的遗传多样性分析及鉴别 | 第42页 |
| 3.4.2 CDDP标记对越橘种质资源的聚类分析 | 第42-43页 |
| 3.5 小结 | 第43-44页 |
| 4 抗寒基因CDDP引物的开发及对越橘种质的扩增 | 第44-52页 |
| 4.1 实验材料与试剂 | 第44-45页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第44页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第44页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第44-45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-46页 |
| 4.2.1 DNA提取与检测 | 第45页 |
| 4.2.2 抗寒基因CDDP引物设计 | 第45-46页 |
| 4.2.3 抗寒基因CDDP引物筛选 | 第46页 |
| 4.2.4 越橘材料的CDDP-PCR扩增 | 第46页 |
| 4.2.5 条带统计与数据分析 | 第46页 |
| 4.3 结果与分析 | 第46-50页 |
| 4.3.1 抗寒基因CDDP引物的设计与筛选结果 | 第46-48页 |
| 4.3.2 引物的多态性分析 | 第48页 |
| 4.3.3 越橘材料的遗传多样性及聚类分析 | 第48-50页 |
| 4.4 讨论 | 第50-51页 |
| 4.5 小结 | 第51-52页 |
| 5 花青素合成途径关键酶基因CDDP引物的开发及对越橘种质的扩增 | 第52-60页 |
| 5.1 实验材料与试剂 | 第52-54页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第52页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第52页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第52-54页 |
| 5.2 实验方法 | 第54页 |
| 5.2.1 DNA提取与检测 | 第54页 |
| 5.2.2 花青素合成相关基因CDDP引物设计 | 第54页 |
| 5.2.3 花青素合成相关基因CDDP引物筛选 | 第54页 |
| 5.2.4 越橘材料的CDDP-PCR扩增 | 第54页 |
| 5.2.5 条带统计与数据分析 | 第54页 |
| 5.3 结果与分析 | 第54-59页 |
| 5.3.1 花青素合成基因CDDP引物的开发与筛选结果 | 第54-55页 |
| 5.3.2 引物的多态性分析 | 第55-57页 |
| 5.3.3 越橘材料的遗传多样性及聚类分析 | 第57-59页 |
| 5.4 讨论 | 第59页 |
| 5.5 小结 | 第59-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 附录 部分CDDP引物扩增结果 | 第68-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
