摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
引言 | 第11-13页 |
1 样本收集、实验方法及器材 | 第13-24页 |
1.1 样本纳入和排除标准 | 第13页 |
1.1.1 正常组的纳入和排除标准 | 第13页 |
1.1.2 结直肠腺瘤组的纳入和排除标准 | 第13页 |
1.1.3 结直肠腺癌组的纳入和排除标准 | 第13页 |
1.2 患者信息采集及签署实验知情同意书 | 第13-14页 |
1.3 标本采集和进一步处理 | 第14-15页 |
1.3.1 血液的采集、运输和保存 | 第14页 |
1.3.2 血浆的提取 | 第14页 |
1.3.3 PBMC 的提取 | 第14页 |
1.3.4 组织的采集、运输和保存 | 第14-15页 |
1.3.5 组织的病理鉴定 | 第15页 |
1.3.6 组织的研磨 | 第15页 |
1.4 RNA 的提取及鉴定 | 第15-17页 |
1.4.1 组织 RNA 提取 | 第15-16页 |
1.4.2 PBMC RNA 提取 | 第16页 |
1.4.3 Nano drop 测定 RNA 浓度及吸光度 | 第16页 |
1.4.4 核酸凝胶电泳 | 第16-17页 |
1.5 荧光实时定量 PCR 技术 | 第17-19页 |
1.5.1 已提取的 RNA 逆转录成 c DNA(RT-PCR) | 第17-18页 |
1.5.2 引物设计 | 第18页 |
1.5.3 Real-Time PCR | 第18-19页 |
1.6 ELISA 技术测定血浆维生素 D 浓度 | 第19-21页 |
1.6.1 试剂盒组成 | 第19-20页 |
1.6.2 操作过程 | 第20-21页 |
1.7 数据处理 | 第21页 |
1.7.1 统计方法 | 第21页 |
1.7.2 2^-ΔΔCt计算法 | 第21页 |
1.8 实验涉及的仪器及试剂材料 | 第21-24页 |
1.8.1 组织收集和保存,提取PBMC、RNA及RNA鉴定涉及的器材 | 第21-22页 |
1.8.2 实时荧光定量PCR涉及的主要器材 | 第22-23页 |
1.8.3 Elisa涉及的主要器材 | 第23-24页 |
2 实验结果 | 第24-44页 |
2.1 组织中VDR mRNA的表达水平 | 第24-30页 |
2.1.1 结直肠腺癌患者癌旁组织和癌组织VDR mRNA的表达 | 第24-25页 |
2.1.2 正常、腺瘤、腺癌三种组织中VDR mRNA的表达水平 | 第25-26页 |
2.1.3 腺癌组织中VDR mRNA表达水平与临床及病理资料的分析 | 第26-27页 |
2.1.4 腺瘤组织中VDR mRNA表达水平与临床及病理资料的分析 | 第27-29页 |
2.1.5 VDR mRNA ΔCt、CEA、CA-199 用于诊断腺癌时的ROC曲线 | 第29页 |
2.1.6 VDR mRNA ΔCt、CEA、CA-199 用于诊断腺瘤时的ROC曲线 | 第29-30页 |
2.2 PBMC中VDR mRNA的表达水平 | 第30-35页 |
2.2.1 正常、腺瘤、腺癌三组PBMC中VDR mRNA的表达水平。 | 第31-32页 |
2.2.2 腺癌患者PBMC中VDR mRNA与患者临床及病理资料的比较 | 第32-34页 |
2.2.3 腺瘤患者PBMC中VDR mRNA与患者临床及病理资料的比较 | 第34-35页 |
2.3 血浆 25-OH-D ELISA实验结果 | 第35-40页 |
2.3.1 三组血浆维生素D的分布情况 | 第35-36页 |
2.3.2 三组间血浆维生素D浓度的比较 | 第36页 |
2.3.3 腺癌组血浆维生素D浓度的临床病理因素相关性分析 | 第36-38页 |
2.3.4 腺瘤组血浆维生素D浓度的临床病理因素相关性分析 | 第38-39页 |
2.3.5 血浆维生素D、CEA、CA-199 用于诊断腺癌时的ROC曲线 | 第39页 |
2.3.6 血浆维生素D、CEA、CA-199 用于诊断腺瘤时的ROC曲线 | 第39-40页 |
2.4 血浆维生素D浓度与PBMC中VDR的表达量相关性分析 | 第40-44页 |
2.4.1 健康志愿者血浆维生素D浓度与PBMC中VDR的表达量相关性分析 | 第40-41页 |
2.4.2 腺癌患者血浆维生素D浓度与PBMC中VDR的表达量相关性分析 | 第41-42页 |
2.4.3 腺瘤患者血浆维生素D浓度与PBMC中VDR的表达量相关性分析 | 第42-44页 |
3 讨论 | 第44-49页 |
4 结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-53页 |
附录A 缩略语对照 | 第53-54页 |
在学研究成果 | 第54页 |