| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词 | 第10-16页 |
| 绪论 | 第16-20页 |
| 第一部分 EGFR抑制剂吉非替尼治疗椎间盘退变的效应及机制研究 | 第20-54页 |
| 1 EGFR受体在椎间盘退变中的表达 | 第20-26页 |
| 1.1 引言 | 第20页 |
| 1.2 实验试剂与仪器 | 第20-22页 |
| 1.2.1 材料和试剂 | 第20-21页 |
| 1.2.2 相关试剂的配制 | 第21-22页 |
| 1.3 实验方法 | 第22-24页 |
| 1.3.1 组织蛋白样本准备 | 第22页 |
| 1.3.2 Western-Blot | 第22-23页 |
| 1.3.3 组织免疫荧光 | 第23-24页 |
| 1.4 实验结果 | 第24-26页 |
| 1.4.1 EGFR和自噬相关因子在人和大鼠正常与退变椎间盘的表达差异 | 第24-26页 |
| 2 软骨特异性敲除EGFR在小鼠椎间盘退变模型发展中的作用 | 第26-34页 |
| 2.1 引言 | 第26页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第26页 |
| 2.2.2 相关试剂配制 | 第26-27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-32页 |
| 2.3.1 小鼠椎间盘退变造模 | 第27页 |
| 2.3.2 基因型鉴定 | 第27-29页 |
| 2.3.3 影像学检查 | 第29-32页 |
| 2.4 实验结果 | 第32-34页 |
| 2.4.1 软骨特异性敲除EGFR在小鼠椎间盘退变模型发展中的作用 | 第32-34页 |
| 3 EGFR抑制剂吉非替尼对髓核细胞的功能维持作用和机制研究 | 第34-40页 |
| 3.1 引言 | 第34页 |
| 3.2 实验试剂与仪器 | 第34-35页 |
| 3.2.1 材料和试剂 | 第34-35页 |
| 3.2.2 髓核细胞培养基配制 | 第35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.3.1 大鼠细胞的分离和培养 | 第35页 |
| 3.3.2 细胞冻存 | 第35-36页 |
| 3.3.3 细胞复苏 | 第36页 |
| 3.3.4 逆转录合成cDNA | 第36页 |
| 3.3.5 实时荧光定量PCR(Real time PCR) | 第36-37页 |
| 3.3.6 细胞蛋白样本准备 | 第37页 |
| 3.3.7 Western-blot | 第37页 |
| 3.4 实验结果 | 第37-40页 |
| 3.4.1 EGFR受体在对髓核细胞功能维持的作用 | 第37-38页 |
| 3.4.2 吉非替尼在髓核细胞功能维持中的作用和机制 | 第38-40页 |
| 4 EGFR抑制剂吉非替尼在大鼠椎间盘退变治疗中的作用和机制研究 | 第40-49页 |
| 4.1 引言 | 第40页 |
| 4.2 实验试剂与仪器 | 第40-41页 |
| 4.2.1 材料和试剂 | 第40-41页 |
| 4.2.2 实验仪器及材料 | 第41页 |
| 4.2.3 实验动物 | 第41页 |
| 4.2.4 相关溶液的配制 | 第41页 |
| 4.3 实验方法 | 第41-45页 |
| 4.3.1 透明质酸吉非替尼复合水凝胶的制备 | 第41页 |
| 4.3.2 扫描电镜样本制备 | 第41-42页 |
| 4.3.3 傅里叶红外分光光度计 | 第42页 |
| 4.3.4 流变学分析 | 第42页 |
| 4.3.5 体外评估水凝胶的生物相容性 | 第42页 |
| 4.3.6 体内评估水凝胶的生物相容性 | 第42-43页 |
| 4.3.7 吉非替尼缓释检测 | 第43页 |
| 4.3.8 建立SD大鼠尾椎椎闻盘退变模型 | 第43-44页 |
| 4.3.9 动物给药方式 | 第44页 |
| 4.3.10 SO染色 | 第44页 |
| 4.3.11 免疫组化(IHC)染色 | 第44-45页 |
| 4.3.12 磁共振成像 | 第45页 |
| 4.4 实验结果 | 第45-49页 |
| 4.4.1 吉非替尼透明质酸水黏胶构建与表征 | 第45-47页 |
| 4.4.2 吉非替尼大鼠体内延缓椎间盘退变进展 | 第47-49页 |
| 5 吉非替尼在非小细胞肺癌合并椎间盘退变患者中的治疗效应 | 第49-52页 |
| 5.1 引言 | 第49页 |
| 5.2 实验试剂与仪器 | 第49页 |
| 5.2.1 材料和试剂 | 第49页 |
| 5.3 实验结果 | 第49-52页 |
| 第一部分 讨论 | 第52-54页 |
| 第二部分 EGFR抑制剂吉非替尼复合个体化胶原支架促进半月板缺损再生及预防骨性关节炎的研究 | 第54-82页 |
| 6 EGFR受体在半月板损伤中的表达 | 第56-61页 |
| 6.1 引言 | 第56页 |
| 6.2 实验试剂与仪器 | 第56-57页 |
| 6.2.1 材料和试剂 | 第56-57页 |
| 6.2.2 相关试剂的配制 | 第57页 |
| 6.3 实验方法 | 第57-59页 |
| 6.3.1 组织蛋白样本准备 | 第57页 |
| 6.3.2 Western-Blot | 第57-58页 |
| 6.3.3 组织免疫组化 | 第58-59页 |
| 6.4 实验结果 | 第59-61页 |
| 6.4.1 EGFR在半月板损伤中的表达 | 第59-61页 |
| 7 软骨特异性敲除EGFR在小鼠半月板损伤中的作用 | 第61-64页 |
| 7.1 引言 | 第61页 |
| 7.2 实验试剂与仪器 | 第61-62页 |
| 7.2.1 实验动物 | 第61-62页 |
| 7.3 实验方法 | 第62页 |
| 7.3.1 小鼠半月板损伤造模 | 第62页 |
| 7.3.2 基因型鉴定 | 第62页 |
| 7.3.3 Safrain-O染色 | 第62页 |
| 7.3.4 免疫组织化学 | 第62页 |
| 7.4 实验结果 | 第62-64页 |
| 7.4.1 软骨特异性敲除EGFR在小鼠半月板损伤中的作用 | 第62-64页 |
| 8 EGFR抑制剂吉非替尼对半月板纤维软骨细胞的功能研究 | 第64-68页 |
| 8.1 引言 | 第64页 |
| 8.2 实验试剂与仪器 | 第64-65页 |
| 8.2.1 材料和试剂 | 第64-65页 |
| 8.2.2 大鼠半月板细胞培养基配制 | 第65页 |
| 8.3 实验方法 | 第65-66页 |
| 8.3.1 大鼠半月板纤维软骨细胞的分离和培养 | 第65页 |
| 8.3.2 细胞冻存 | 第65页 |
| 8.3.3 细胞复苏 | 第65-66页 |
| 8.3.4 逆转录合成cDNA | 第66页 |
| 8.3.5 实时荧光定量PCR(Real time PCR) | 第66页 |
| 8.3.6 Western-blot | 第66页 |
| 8.4 实验结果 | 第66-68页 |
| 8.4.1 吉非替尼在髓核细胞中的功能和机制 | 第66-68页 |
| 9 EGFR抑制剂吉非替尼在小鼠半月损伤治疗中的作用 | 第68-72页 |
| 9.1 引言 | 第68页 |
| 9.2 实验试剂与仪器 | 第68页 |
| 9.2.1 实验动物 | 第68页 |
| 9.3 实验方法 | 第68-70页 |
| 9.3.1 小鼠半月板损伤造模 | 第68页 |
| 9.3.2 动物给药方式 | 第68页 |
| 9.3.3 Safrain-O染色 | 第68-69页 |
| 9.3.4 免疫组织化学 | 第69-70页 |
| 9.4 实验结果 | 第70-72页 |
| 10 个体化胶原支架复合关节腔注射吉非替尼促进半月板的再生及预防骨性关节炎的研究 | 第72-80页 |
| 10.1 引言 | 第72页 |
| 10.2 材料和试剂 | 第72-73页 |
| 10.2.1 实验仪器及材料 | 第73页 |
| 10.2.2 相关试剂的配制 | 第73页 |
| 10.2.3 实验动物 | 第73页 |
| 10.3 实验方法 | 第73-74页 |
| 10.3.1 扫描电镜分析 | 第73页 |
| 10.3.2 兔子骨软骨缺损的建立和支架植入 | 第73页 |
| 10.3.3 兔子膝关节半月板样本的评估 | 第73-74页 |
| 10.3.4 影像学评估关节间隙 | 第74页 |
| 10.4 实验结果 | 第74-80页 |
| 10.4.1 个体化层状胶原支架制备及表征 | 第74-75页 |
| 10.4.2 个体化胶原支架复合关节腔注射吉非替尼促进半月板的再生的研究 | 第75-80页 |
| 第二部分 讨论 | 第80-82页 |
| 第三部分 总结 | 第82-86页 |
| 1 温敏透明质酸水凝胶缓释吉非替尼治疗椎间盘退变的效应和机制研究 | 第82-83页 |
| 2 吉非替尼通过定制的胶原支架递送表皮促进兔半月板缺损再生与骨性关节炎的预防 | 第83-86页 |
| 参考文献 | 第86-97页 |
| 综述 | 第97-113页 |
| 参考文献 | 第106-113页 |
| 作者简历 | 第113-116页 |
