| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 1 绪论 | 第9-19页 |
| 1.1 乙烯及其作用机理 | 第9-11页 |
| 1.1.1 乙烯的发现和结构特点 | 第9页 |
| 1.1.2 乙烯的生物合成 | 第9-11页 |
| 1.1.3 乙烯的生理效应 | 第11页 |
| 1.1.4 乙烯的作用机理 | 第11页 |
| 1.2 ACS的作用机理 | 第11-17页 |
| 1.2.1 ACS催化SAM转化为ACC和MTA的反应机制 | 第12-13页 |
| 1.2.2 ACS在底物SAM作用下的失活机理及ACS的其他活性 | 第13-16页 |
| 1.2.3 ACS的进化亲缘关系 | 第16-17页 |
| 1.3 研究背景 | 第17-18页 |
| 1.4 实验内容及意义 | 第18-19页 |
| 2 葡萄ACS家族基因的克隆和生物信息学分析 | 第19-34页 |
| 2.1 材料与方法 | 第19-26页 |
| 2.1.1 葡萄材料 | 第19页 |
| 2.1.2 数据库 | 第19页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第19页 |
| 2.1.4 试剂及耗材 | 第19页 |
| 2.1.5 实验方法 | 第19-25页 |
| 2.1.6 葡萄中ACS家族基因的生物信息学分析 | 第25-26页 |
| 2.2 结果与分析 | 第26-32页 |
| 2.2.1 葡萄总RNA电泳检测 | 第26页 |
| 2.2.2 葡萄ACS基因的克隆 | 第26-27页 |
| 2.2.3 生物信息学分析 | 第27-32页 |
| 2.3 讨论 | 第32-34页 |
| 3 葡萄VvACS5和VvACS8基因在不同胁迫条件下的诱导表达 | 第34-42页 |
| 3.1 材料与方法 | 第34-35页 |
| 3.1.1 材料处理 | 第34页 |
| 3.1.2 RNA提取、纯化及cDNA的合成 | 第34页 |
| 3.1.3 引物设计 | 第34页 |
| 3.1.4 荧光实时定量PCR | 第34-35页 |
| 3.2 结果与分析 | 第35-39页 |
| 3.2.1 葡萄总RNA电泳检测图 | 第35页 |
| 3.2.2 荧光实时定量结果分析 | 第35-39页 |
| 3.3 讨论 | 第39-42页 |
| 4 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-50页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第50-51页 |
| 附录A 4个VvACS基因ORF核苷酸序列及氨基酸序列分析 | 第51-54页 |
| 附录B VvACS基因翻译后氨基酸序列保守域预测 | 第54-55页 |
| 附录C VvACS基因与已知9个番茄ACS基因和11个拟南芥ACS基因序列分析图 | 第55-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
