| 中文摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 引言 | 第13-14页 |
| 1 实验材料 | 第14-18页 |
| 1.1 实验对象 | 第14页 |
| 1.2 实验试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 主要仪器 | 第15-16页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第16-18页 |
| 2 实验方法 | 第18-29页 |
| 2.1 HSC-T6细胞的培养 | 第18-20页 |
| 2.1.1 HSC-T6细胞的传代 | 第18-19页 |
| 2.1.2 HSC-T6细胞的换液 | 第19页 |
| 2.1.3 HSC-T6细胞的冻存 | 第19-20页 |
| 2.1.4 HSC-T6细胞的复苏 | 第20页 |
| 2.2 细胞计数方法 | 第20页 |
| 2.3 各药物对HSC-T6细胞增殖情况的影响 | 第20-21页 |
| 2.3.1 CCK-8 法检测TFL对HSC-T6细胞的增殖情况 | 第20-21页 |
| 2.3.2 罗格列酮及GW9662对HSC-T6细胞的增殖情况 | 第21页 |
| 2.4 实验分组 | 第21-22页 |
| 2.5 CCK-8 法检测各实验分组中的HSC-T6细胞的增殖情况 | 第22-23页 |
| 2.6 各实验组中的细胞上清液TIMP-1、MMP-2、Ⅰ、Ⅲ型胶原含量 | 第23-24页 |
| 2.6.1 检测方法 | 第23页 |
| 2.6.2 标准品的稀释 | 第23页 |
| 2.6.3 加样及检测 | 第23-24页 |
| 2.7 q PCR法检测各实验组PPAR-γ、TGF-β1 mRNA表达 | 第24-28页 |
| 2.7.1 PCR引物的设计与合成 | 第24-25页 |
| 2.7.2 总RNA的提取 | 第25-26页 |
| 2.7.3 逆转录cDNA的合成 | 第26-27页 |
| 2.7.4 荧光定量PCR | 第27页 |
| 2.7.5 运用 2~(-△ △ Ct)法对目的基因表达差异分析 | 第27-28页 |
| 2.8 免疫细胞化学法检测各实验组PPAR-γ、TGF-β1 的蛋白分布与表达 | 第28-29页 |
| 2.9 统计学分析 | 第29页 |
| 3 实验结果 | 第29-38页 |
| 3.1 TFL对HSC-T6细胞的增殖抑制作用 | 第29-30页 |
| 3.2 各实验组HSC-T6细胞的形态观察 | 第30页 |
| 3.3 各实验组HSC-T6细胞的增殖情况 | 第30-31页 |
| 3.4 各实验组细胞外基质胶原蛋白含量情况 | 第31-32页 |
| 3.5 各实验组细胞TIMP-1、MMP-2 分泌情况 | 第32-33页 |
| 3.6 各实验组HSC-T6对PPAR-γ 及TGF-β1mRNA表达的影响 | 第33-35页 |
| 3.7 各实验组HSC-T6对PPAR-γ 及TGF-β1 蛋白表达的影响 | 第35-37页 |
| 3.8 HSC-T6细胞中PPAR-γ 与TGF-β1 表达的相关性分析 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-57页 |
| 4.1 肝纤维化的发病机制 | 第38-39页 |
| 4.2 中医药对肝纤维化的防治 | 第39-44页 |
| 4.3 TFL抗肝纤维化的理论基础 | 第44-49页 |
| 4.3.1 荔枝核总黄酮抗肝纤维化的疗效研究 | 第45页 |
| 4.3.2 荔枝核总黄酮抗肝纤维化机制研究 | 第45-46页 |
| 4.3.3 对肝星形细胞的影响 | 第46-49页 |
| 4.4 PPAR-γ/TGF-β1 信号通路与肝纤维化 | 第49-52页 |
| 4.5 Ⅰ、Ⅲ型胶原与肝纤维化 | 第52-54页 |
| 4.6 TIMP-1、MMP-2 与肝纤维化 | 第54-55页 |
| 4.7 展望 | 第55-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 缩略词表 | 第65-66页 |
| 综述 | 第66-78页 |
| 参考文献 | 第72-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 个人简介及攻读学位期间获得的科研成果 | 第79-80页 |
