前言 | 第10-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-27页 |
1.1 复方川芎当归研究进展 | 第12-15页 |
1.1.1 化学成分 | 第12页 |
1.1.2 抗氧化 | 第12-13页 |
1.1.3 抗血小板聚集 | 第13页 |
1.1.4 对血管细胞影响 | 第13-15页 |
1.1.5 改善微循环与脑组织保护 | 第15页 |
1.2 活性氧参与的信号调节 | 第15-18页 |
1.2.1 活性氧的产生 | 第15-16页 |
1.2.2 ROS 参与的细胞信号调节 | 第16-18页 |
1.3 一氧化氮(NO)信号通路 | 第18-20页 |
1.3.1 NO | 第18-19页 |
1.3.2 NO 参与的细胞信号调控 | 第19-20页 |
1.4 丝裂原激活蛋白激酶 | 第20-24页 |
1.5 细胞周期 | 第24-26页 |
1.6 本文研究意义和主要的研究内容 | 第26-27页 |
第二章 ELCAS 对血管细胞生长的调节效应 | 第27-38页 |
2.1 材料与方法 | 第27-30页 |
2.1.1 主要仪器和试剂 | 第27-28页 |
2.1.2 药物提取 | 第28页 |
2.1.3 细胞培养 | 第28页 |
2.1.4 细胞增生与存活分析 | 第28-29页 |
2.1.5 细胞蛋白质合成分析 | 第29页 |
2.1.6 细胞周期分析 | 第29-30页 |
2.2 结果与讨论 | 第30-37页 |
2.2.1 血管平滑肌细胞的原代培养 | 第30-31页 |
2.2.2 ELCAS 对血管平滑肌细胞增生的影响 | 第31-33页 |
2.2.3 ELCAS 对内皮细胞损伤保护影响 | 第33-34页 |
2.2.4 ELCAS 对细胞蛋白质合成的影响 | 第34-35页 |
2.2.5 ELCAS 对细胞周期影响 | 第35-37页 |
2.3 小结 | 第37-38页 |
第三章 ELCAS 对细胞活性氧和 NO 的影响 | 第38-51页 |
3.1 材料与方法 | 第38-43页 |
3.1.1 主要仪器和试剂 | 第38页 |
3.1.2 川芎当归提取物 | 第38页 |
3.1.3 细胞培养 | 第38-39页 |
3.1.4 活性氧分析 | 第39页 |
3.1.5 酶活力分析 | 第39-40页 |
3.1.6 NO 分析 | 第40-41页 |
3.1.7 免疫印迹(Western blot)分析 | 第41-43页 |
3.2 结果与讨论 | 第43-49页 |
3.2.1 ELCAS 对细胞内ROS 的影响 | 第43-44页 |
3.2.2 ELCAS 对细胞抗氧化酶活力影响 | 第44-46页 |
3.2.3 ELCAS 对细胞内NO影响 | 第46-48页 |
3.2.4 ELCAS 对细胞内一氧化氮合成酶影响 | 第48-49页 |
3.3 结论 | 第49-51页 |
第四章 ELCAS 对血管平滑肌细胞 MAPK 信号通路与周期蛋白的调控 | 第51-57页 |
4.1 材料与方法 | 第51-52页 |
4.1.1 试剂 | 第51页 |
4.1.2 川芎当归的提取 | 第51页 |
4.1.3 细胞培养 | 第51-52页 |
4.1.4 Western blot 分析 | 第52页 |
4.2 结果与讨论 | 第52-56页 |
4.2.1 ELCAS 时间依赖性的影响MAPK 激活 | 第52-53页 |
4.2.2 ELCAS 浓度依赖性的影响MAPK 激活 | 第53-55页 |
4.2.3 ELCAS 对 Cyclin D1 和p21 的影响 | 第55页 |
4.2.4 ELCAS 对pRb 的影响 | 第55-56页 |
4.3 结论 | 第56-57页 |
第五章 ELCAS 活性物质及阿魏酸对内皮细胞 ERK 信号通路的影响 | 第57-72页 |
5.1 材料与方法 | 第57-59页 |
5.1.1 试剂 | 第57页 |
5.1.2 川芎当归提取 | 第57页 |
5.1.3 HPLC 分析 | 第57-58页 |
5.1.4 细胞培养 | 第58页 |
5.1.5 内皮细胞损伤分析 | 第58页 |
5.1.6 内皮细胞增生分析 | 第58页 |
5.1.7 血管平滑肌细胞增生分析 | 第58页 |
5.1.8 阿魏酸对内皮细胞增生分析 | 第58页 |
5.1.9 阿魏酸对内皮细胞周期分析 | 第58-59页 |
5.1.10 阿魏酸对内皮细胞MAPK 调节 | 第59页 |
5.1.11 阿魏酸对内皮细胞 NO 影响 | 第59页 |
5.2 结果与讨论 | 第59-70页 |
5.2.1 ELCAS 的 HPLC 结果 | 第59-61页 |
5.2.2 几种物质对内皮细胞损伤的影响 | 第61-62页 |
5.2.3 几种物质对内皮细胞增生的影响 | 第62页 |
5.2.4 几种物质对血管平滑肌细胞增生影响 | 第62-63页 |
5.2.5 阿魏酸对内皮细胞增生影响 | 第63-64页 |
5.2.6 阿魏酸对内皮细胞周期影响 | 第64-65页 |
5.2.7 阿魏酸对内皮细胞 MAPK 影响 | 第65-66页 |
5.2.8 阿魏酸对内皮细胞 NO 影响 | 第66页 |
5.2.9 L-NAME, SNP, PD 98059 对血清诱导的 NO 产生和 ERK1/2 的影响 | 第66-69页 |
5.2.10 阿魏酸对内皮细胞周期蛋白的影响 | 第69-70页 |
5.3 结论 | 第70-72页 |
第六章 阿魏酸抑制 Angiotensin II 诱导的细胞增生信号 | 第72-81页 |
6.1 材料与方法 | 第72-73页 |
6.1.1 试剂 | 第72页 |
6.1.2 细胞培养 | 第72页 |
6.1.3 血管平滑肌细胞增生 | 第72页 |
6.1.4 细胞周期分析 | 第72-73页 |
6.1.5 免疫印迹分析 | 第73页 |
6.2 结果与讨论 | 第73-79页 |
6.2.1 阿魏酸对血管平滑肌细胞增生的抑制 | 第73-74页 |
6.2.2 阿魏酸对血管平滑肌细胞周期的影响 | 第74-75页 |
6.2.3 阿魏酸对血管平滑肌细胞 MAPK 通路的影响 | 第75-77页 |
6.2.4 阿魏酸对血管平滑肌细胞Cyclin D1 和p21 的影响 | 第77-78页 |
6.2.5 阿魏酸对血管平滑肌细胞pRb 的影响 | 第78-79页 |
6.3 结论 | 第79-81页 |
第七章 细胞信号调节模型 | 第81-92页 |
7.1 实验与方法 | 第81页 |
7.1.1 免疫印迹分析 | 第81页 |
7.1.2 方法 | 第81页 |
7.2 结果与讨论 | 第81-91页 |
7.2.1 细胞信号通路模型描述 | 第81-83页 |
7.2.2 初始浓度,方程,参数 | 第83-86页 |
7.2.3 模拟血管紧张素 II刺激AT1信号 | 第86-89页 |
7.2.4 模拟 k、磷酸化 ERK 百分含量和药物浓度之间的关联 | 第89-91页 |
7.3 结论 | 第91-92页 |
第八章 结论与展望 | 第92-95页 |
8.1 结论 | 第92-93页 |
8.2 展望 | 第93-95页 |
参考文献 | 第95-108页 |
发表论文和参加科研情况 | 第108-109页 |
致谢 | 第109页 |