| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 绪论 | 第14-46页 |
| 1.1 磷酸化蛋白质组学概述 | 第14-15页 |
| 1.2 磷酸化蛋白质组学研究策略 | 第15-16页 |
| 1.3 磷酸化蛋白质/肽段的分离与富集 | 第16-23页 |
| 1.3.1 免疫沉淀法 | 第16页 |
| 1.3.2 亲和色谱法 | 第16-19页 |
| 1.3.3 液相色谱法 | 第19-22页 |
| 1.3.4 化学修饰法 | 第22-23页 |
| 1.4 糖蛋白/肽段的分离富集 | 第23-25页 |
| 1.4.1 凝集素亲合法 | 第23-24页 |
| 1.4.2 硼酸法 | 第24页 |
| 1.4.3 肼化学法 | 第24-25页 |
| 1.4.4 亲水作用法 | 第25页 |
| 1.5 生物质谱技术简介 | 第25-29页 |
| 1.5.1 概述 | 第25-26页 |
| 1.5.2 生物质谱解析蛋白质磷酸化 | 第26-29页 |
| 1.6 功能化复合纳米材料在蛋白质组学中的应用 | 第29-31页 |
| 1.7 本论文的选题意义 | 第31-33页 |
| 1.8 参考文献 | 第33-46页 |
| 第二章 基于聚多巴胺为配体的IMAC新材料的磷酸化肽段富集新技术研究 | 第46-86页 |
| 2.1 前言 | 第46-48页 |
| 2.2 固定Ti~(4+)磁性聚多巴胺的磷酸化肽分离分析新技术 | 第48-58页 |
| 2.2.1 实验部分 | 第49-50页 |
| 2.2.1.1 原料和试剂 | 第49页 |
| 2.2.1.2 合成Fe_3O_4@PD-Ti~(4+)微球 | 第49页 |
| 2.2.1.3 表征Fe_3O_4@PD-Ti~(4+)微球 | 第49页 |
| 2.2.1.4 样品制备 | 第49-50页 |
| 2.2.1.5 Fe_3O_4@PD-Ti~(4+)球选择性富集磷酸化肽段 | 第50页 |
| 2.2.1.6 MALDI-TOF MS检测 | 第50页 |
| 2.2.2 结果与讨论 | 第50-57页 |
| 2.2.2.1 Fe_3O_4@PD-Ti~(4+)微球的合成与表征 | 第50-53页 |
| 2.2.2.2 Fe_3O_4@PD-Ti~(4+)微球富集标准磷酸化肽段 | 第53-55页 |
| 2.2.2.3 Fe_3O_4@PD-Ti~(4+)微球富集人血清中磷酸化肽段 | 第55-57页 |
| 2.2.3 小结 | 第57-58页 |
| 2.3 固定Ti~(4+)石墨烯聚多巴胺的磷酸化肽分离分析新技术 | 第58-71页 |
| 2.3.1 实验部分 | 第58-62页 |
| 2.3.1.1 原料和试剂 | 第58页 |
| 2.3.1.2 合成G@PD-Ti~(4+)纳米材料 | 第58-59页 |
| 2.3.1.3 合成MagG@PD-Ti~(4+)纳米材料 | 第59页 |
| 2.3.1.4 表征G@PD-Ti~(4+)和MagG@PD-Ti~(4+)纳米材料 | 第59页 |
| 2.3.1.5 样品制备 | 第59页 |
| 2.3.1.6 G@PD-Ti~(4+)和MagG@PD-Ti~(4+)选择性富集磷酸化肽段 | 第59-60页 |
| 2.3.1.7 MagG@PD-Ti~(4+)富集鼠脑中磷酸化肽段 | 第60页 |
| 2.3.1.8 MALDI-TOF MS检测 | 第60页 |
| 2.3.1.9 Nano-LC-ESI MS/MS检测与数据处理 | 第60-62页 |
| 2.3.2 结果与讨论 | 第62-70页 |
| 2.3.2.1 G@PD-Ti~(4+)和MagG@PD-Ti~(4+)的合成与表征 | 第62-64页 |
| 2.3.2.2 G@PD-Ti~(4+)和MagG@PD-Ti~(4+)富集标准磷酸化肽段 | 第64-68页 |
| 2.3.2.3 G@PD-Ti~(4+)和MagG@PD-Ti~(4+)富集人血清中磷酸化肽段 | 第68-70页 |
| 2.3.2.4 MagG@PD-Ti~(4+)富集鼠脑中磷酸化肽段 | 第70页 |
| 2.3.3 小结 | 第70-71页 |
| 2.4 固定Ti~(4+)多级孔硅聚多巴胺的磷酸化肽快速分离分析新技术 | 第71-81页 |
| 2.4.1 实验部分 | 第71-73页 |
| 2.4.1.1 原料和试剂 | 第71页 |
| 2.4.1.2 合成HOMMS@PD-Ti~(4+)纳米材料 | 第71-72页 |
| 2.4.1.3 表征HOMMS@PD-Ti~(4+)纳米材料 | 第72页 |
| 2.4.1.4 样品制备 | 第72页 |
| 2.4.1.5 HOMMS@PD-Ti~(4+)快速富集磷酸化肽段 | 第72页 |
| 2.4.1.6 MALDI-TOF MS检测 | 第72-73页 |
| 2.4.2 结果与讨论 | 第73-80页 |
| 2.4.2.1 HOMMS@PD-Ti~(4+)的合成与表征 | 第73-76页 |
| 2.4.2.2 HOMMS@PD-Ti~(4+)快速富集标准磷酸化肽段 | 第76-79页 |
| 2.4.2.3 HOMMS@PD-Ti~(4+)富集人血清中磷酸化肽段 | 第79-80页 |
| 2.4.3 小结 | 第80-81页 |
| 2.5 参考文献 | 第81-86页 |
| 第三章 基于新型MOAC复合纳米材料的磷酸化肽段富集新技术研究 | 第86-126页 |
| 3.1 前言 | 第86-87页 |
| 3.2 碳纳米管/TiO_2复合纳米材料的磷酸化肽段分离分析新技术 | 第87-99页 |
| 3.2.1 实验部分 | 第87-90页 |
| 3.2.1.1 原料和试剂 | 第87页 |
| 3.2.1.2 合成CNTs@TiO_2复合纳米材料 | 第87-88页 |
| 3.2.1.3 合成MagCNTs@TiO_2复合纳米材料 | 第88页 |
| 3.2.1.4 表征CNTs@TiO_2和MagNTs@TiO_2复合纳米材料 | 第88页 |
| 3.2.1.5 样品制备 | 第88页 |
| 3.2.1.6 CNTs@TiO_2和MagCNTs@TiO_2富集磷酸化肽段 | 第88-89页 |
| 3.2.1.7 MALDI-TOF MS检测 | 第89-90页 |
| 3.2.2 结果与讨论 | 第90-98页 |
| 3.2.2.1 CNTs@TiO_2和MagCNTs@TiO_2的合成与表征 | 第90-92页 |
| 3.2.2.2 CNTs@TiO_2和MagCNTs@TiO_2富集标准磷酸化肽段 | 第92-97页 |
| 3.2.2.3 CNTs@TiO_2和MagCNTs@TiO_2富集人血清中磷酸化肽段 | 第97-98页 |
| 3.2.3 小结 | 第98-99页 |
| 3.3 G@PD@TiO_2的磷酸化肽分离分析新技术 | 第99-110页 |
| 3.3.1 实验部分 | 第99-102页 |
| 3.3.1.1 原料和试剂 | 第99-100页 |
| 3.3.1.2 合成G@PD@TiO_2复合纳米材料 | 第100页 |
| 3.3.1.3 表征G@PD@TiO_2复合纳米材料 | 第100页 |
| 3.3.1.4 样品制备 | 第100页 |
| 3.3.1.5 G@PD@TiO_2选择性富集磷酸化肽段 | 第100-101页 |
| 3.3.1.6 G@PD@TiO_2富集鼠脑中磷酸化肽段 | 第101页 |
| 3.3.1.7 MALDI-TOF MS检测 | 第101页 |
| 3.3.1.8 Nano-LC-ESI MS检测与数据处理 | 第101-102页 |
| 3.3.2 结果与讨论 | 第102-109页 |
| 3.3.2.1 G@PD@TiO_2复合纳米材料的合成与表征 | 第102-105页 |
| 3.3.2.2 G@PD@TiO_2富集标准磷酸化肽段 | 第105-107页 |
| 3.3.2.3 G@PD@TiO_2富集人血清和鼠脑中磷酸化肽段 | 第107-109页 |
| 3.3.3 小结 | 第109-110页 |
| 3.4 多级孔硅/TiO_2的磷酸化肽分离分析新技术 | 第110-119页 |
| 3.4.1 实验部分 | 第110-112页 |
| 3.4.1.1 原料和试剂 | 第110页 |
| 3.4.1.2 合成HOMMS@TiO_2复合纳米材料 | 第110-111页 |
| 3.4.1.3 表征HOMMS@TiO_2复合纳米材料 | 第111页 |
| 3.4.1.4 样品制备 | 第111页 |
| 3.4.1.5 HOMMS@TiO_2选择性富集磷酸化肽段 | 第111-112页 |
| 3.4.1.6 MALDI-TOF MS检测 | 第112页 |
| 3.4.2 结果与讨论 | 第112-118页 |
| 3.4.2.1 HOMMS@TiO_2的合成与表征 | 第112-114页 |
| 3.4.2.2 HOMMS@TiO_2快速富集标准磷酸化肽段 | 第114-117页 |
| 3.4.2.3 HOMMS@TiO_2富集人血清中磷酸化肽段 | 第117-118页 |
| 3.4.3 小结 | 第118-119页 |
| 3.5 参考文献 | 第119-126页 |
| 第四章 基于多级孔氧化铝的磷酸化蛋白质酶解并同时富集新技术研究 | 第126-140页 |
| 4.1 前言 | 第126-127页 |
| 4.2 实验部分 | 第127-129页 |
| 4.2.1 原料和试剂 | 第127-128页 |
| 4.2.2 合成HOMMA | 第128页 |
| 4.2.3 表征HOMMA | 第128页 |
| 4.2.4 用HOMMA固定蛋白/酶 | 第128页 |
| 4.2.5 用HOMMA 同时酶解富集磷酸化肽段并进行质谱分析 | 第128-129页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第129-136页 |
| 4.3.1 HOMMA的合成及表征 | 第129-131页 |
| 4.3.2 HOMMA酶解并富集磷酸化肽段 | 第131-136页 |
| 4.4 结论 | 第136-137页 |
| 4.5 参考文献 | 第137-140页 |
| 第五章 基于HOMMS@PolyVPBA纳米材料的糖肽富集新技术研究 | 第140-154页 |
| 5.1 前言 | 第140-141页 |
| 5.2 实验部分 | 第141-143页 |
| 5.2.1 原料和试剂 | 第141-142页 |
| 5.2.2 合成HOMMS@PolyVPBA复合纳米材料 | 第142页 |
| 5.2.3 表征HOMMS@PolyVPBA复合纳米材料 | 第142页 |
| 5.2.4 样品制备 | 第142-143页 |
| 5.2.5 HOMMS@PolyVPBA复合材料选择性富集糖肽 | 第143页 |
| 5.2.6 MALDI-TOF MS检测 | 第143页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第143-149页 |
| 5.3.1 HOMMS@PolyVPBA复合纳米材料的合成与表征 | 第143-146页 |
| 5.3.2 HOMMS@PolyVPBA复合纳米材料用于糖肽的富集 | 第146-149页 |
| 5.4 本章小结 | 第149-150页 |
| 5.5 参考文献 | 第150-154页 |
| 附表 | 第154-176页 |
| 论文发表情况 | 第176-178页 |
| 致谢 | 第178-179页 |
