| 缩略语及符号 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| (一)、引言 | 第13-18页 |
| (二)、材料和方法 | 第18-29页 |
| 1. 纯化培养大鼠视网膜Muller细胞 | 第18-19页 |
| 1.1 物品准备 | 第18页 |
| 1.2 培养步骤 | 第18-19页 |
| 2. 激活Muller细胞 | 第19页 |
| 3. 液体配制 | 第19-22页 |
| 4. 免疫荧光细胞化学 | 第22-23页 |
| 4.1 标本的制备 | 第22页 |
| 4.2 免疫荧光细胞化学反应 | 第22页 |
| 4.3 激光共聚焦扫描显微镜 | 第22-23页 |
| 5. 蛋白免疫印迹(Western blot)分析 | 第23-25页 |
| 5.1 样品制备 | 第23-24页 |
| 5.2 SDS-PAGE凝胶电泳及转印 | 第24页 |
| 5.3 封闭 | 第24页 |
| 5.4 一抗孵育 | 第24-25页 |
| 5.5 二抗孵育 | 第25页 |
| 5.6 扫描条带 | 第25页 |
| 6. 实时荧光定量PCR(Real Time PCR) | 第25-28页 |
| 6.1 RNA样品制备 | 第25-26页 |
| 6.2 反转录反应 | 第26-27页 |
| 6.3 Real Time PCR反应 | 第27-28页 |
| 7. 数据处理及统计分析 | 第28-29页 |
| (三) 、实验结果 | 第29-38页 |
| 1 、大鼠视网膜Muller细胞的纯化培养及鉴定 | 第29页 |
| 2、DHPG处理对Muller细胞GFAP表达的影响 | 第29-31页 |
| 3、DHPG处理对Muller细胞Kir4.1蛋白表达的影响 | 第31-35页 |
| 4、DHPG处理对Muller细胞Kir4.1和Kir2.1 mRNA的影响 | 第35-38页 |
| (四) 讨论 | 第38-41页 |
| 1. 纯化培养的大鼠视网膜Muller细胞激活模型的建立 | 第38-39页 |
| 2. DHPG诱导Muller细胞膜Kir通道蛋白下调 | 第39-40页 |
| 3. 展望 | 第40-41页 |
| (五) 总结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 综述 | 第46-65页 |
| 参考文献 | 第56-65页 |
| 学习期间完成的论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-68页 |
