| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 前言 | 第13-26页 |
| 1.1 SiO_2-NPs的性质及用途 | 第13页 |
| 1.2 SiO_2-NPs的来源与接触途径 | 第13-14页 |
| 1.3 SiO_2-NPs在人体内的吸收、代谢和排泄 | 第14页 |
| 1.4 SiO_2-NPs的生物毒性 | 第14-17页 |
| 1.4.1 SiO_2-NPs对个体生长和行为变化的效应 | 第15-16页 |
| 1.4.2 SiO_2-NPs对心血管的毒性效应 | 第16页 |
| 1.4.3 SiO_2-NPs对神经系统的毒性效应 | 第16-17页 |
| 1.5 SiO_2-NPs对生殖系统的毒性效应 | 第17-18页 |
| 1.5.1 SiO_2-NPs对雄性生殖系统的毒性效应 | 第17页 |
| 1.5.2 SiO_2-NPs对雌性生殖系统的毒性效应 | 第17-18页 |
| 1.5.3 SiO_2-NPs对胚胎发育的毒性效应 | 第18页 |
| 1.6 SiO_2-NPs的毒性效应机制 | 第18-21页 |
| 1.6.1 SiO_2-NPs的细胞膜毒性效应 | 第18-19页 |
| 1.6.2 SiO_2-NPs的氧化损伤及炎症反应 | 第19-20页 |
| 1.6.3 SiO_2-NPs对细胞周期和凋亡的毒性效应 | 第20-21页 |
| 1.6.4 SiO_2-NPs对DNA损伤和基因表达的影响 | 第21页 |
| 1.7 斑马鱼在纳米材料毒性研究中的应用 | 第21-24页 |
| 1.7.1 斑马鱼及其胚胎在纳米颗粒的生殖及发育毒性研究中的应用 | 第22页 |
| 1.7.2 斑马鱼及其胚胎在纳米颗粒的神经及发育神经毒性研究中的应用 | 第22-24页 |
| 1.7.3 斑马鱼及其胚胎在纳米颗粒的心血管发育毒性研究中的应用 | 第24页 |
| 1.8 本文主要研究内容及目的 | 第24-26页 |
| 第2章 SiO_2-NPs暴露对斑马鱼行为的影响研究 | 第26-37页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第26页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第26页 |
| 2.1.4 试剂的配制 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-28页 |
| 2.2.1 SiO_2-NPs（10~20nm）的表征 | 第27页 |
| 2.2.2 实验动物的分组 | 第27页 |
| 2.2.3 斑马鱼行为变化的测定 | 第27页 |
| 2.2.4 统计学分析 | 第27-28页 |
| 2.3 结果 | 第28-35页 |
| 2.3.1 SiO_2-NPs（10-20nm）的表征 | 第28-29页 |
| 2.3.2 SiO_2-NPs对斑马鱼游动行为的影响 | 第29-32页 |
| 2.3.3 SiO_2-NPs对斑马鱼区域分布的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.4 斑马鱼群体行为实验结果 | 第33-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-37页 |
| 第3章 SiO_2-NPs对斑马鱼卵巢基质细胞的毒性效应 | 第37-59页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第37-39页 |
| 3.1.1 受试细胞 | 第37页 |
| 3.1.2 实验材料 | 第37页 |
| 3.1.3 主要试剂与试剂盒 | 第37-38页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第38页 |
| 3.1.5 试剂的配制 | 第38-39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-46页 |
| 3.2.1 斑马鱼卵巢基质细胞的原代培养 | 第39-40页 |
| 3.2.2 SiO_2-NPs的染毒 | 第40页 |
| 3.2.3 斑马鱼卵巢基质细胞活力分析 | 第40页 |
| 3.2.4 SiO_2-NPs暴露下斑马鱼卵巢基质细胞氧化应激损伤指标的检测 | 第40-41页 |
| 3.2.5 彗星实验检测斑马鱼卵巢基质细胞细胞核DNA的损伤情况 | 第41-43页 |
| 3.2.6 Si O_2-NPs暴露下斑马鱼卵巢基质细胞氧化应激相关基因、生殖相关激素基因和癌症相关基因表达水平的测定 | 第43-46页 |
| 3.2.7 统计学分析 | 第46页 |
| 3.3 结果 | 第46-55页 |
| 3.3.1 SiO_2-NPs暴露下斑马鱼卵巢基质细胞活力变化情况 | 第46页 |
| 3.3.2 SiO_2-NPs暴露下对斑马鱼卵巢基质细胞形态学的变化观察 | 第46-47页 |
| 3.3.3 SiO_2-NPs暴露下对斑马鱼卵巢基质细胞氧化应激损伤的检测结果分析 | 第47-48页 |
| 3.3.4 单细胞凝胶电泳（SCGE）检测斑马鱼卵巢基质细胞细胞核DNA的损伤结果分析 | 第48-50页 |
| 3.3.5 荧光定量PCR反应各基因引物的标准曲线、扩增曲线和熔解曲线 | 第50-53页 |
| 3.3.6 SiO_2-NPs对斑马鱼卵巢基质细胞氧化损伤基因表达水平影响 | 第53-54页 |
| 3.3.7 SiO_2-NPs对斑马鱼卵巢基质细胞生殖相关激素基因表达水平的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.8 SiO_2-NPs对斑马鱼卵巢基质细胞癌症相关基因表达水平影响 | 第55页 |
| 3.4 讨论 | 第55-58页 |
| 3.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 第4章 SiO_2-NPs对成年雌性斑马鱼基因和蛋白表达的影响 | 第59-76页 |
| 4.1 实验材料与试剂 | 第59-62页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第59页 |
| 4.1.2 实验材料 | 第59页 |
| 4.1.3 主要试剂与试剂盒 | 第59-60页 |
| 4.1.4 主要仪器 | 第60-61页 |
| 4.1.5 主要试剂的配制 | 第61-62页 |
| 4.2 实验方法 | 第62-68页 |
| 4.2.1 动物分组及染毒 | 第62页 |
| 4.2.2 SiO_2-NPs在斑马鱼卵巢组织中的定位观察 | 第62-63页 |
| 4.2.3 斑马鱼卵巢脏器系数的测定 | 第63页 |
| 4.2.4 荧光定量PCR检测斑马鱼卵巢组织lhr和mbd2基因表达水平 | 第63-66页 |
| 4.2.5 Western Blot检测卵巢组织中LHR和MBD2蛋白表达水平 | 第66-68页 |
| 4.2.6 统计学分析 | 第68页 |
| 4.3 结果 | 第68-73页 |
| 4.3.1 SiO_2-NPs在斑马鱼卵巢组织中的定位观察 | 第68-69页 |
| 4.3.2 斑马鱼卵巢脏器系数的测定 | 第69-70页 |
| 4.3.3 荧光定量PCR反应各基因引物的标准曲线、扩增曲线和熔解曲线 | 第70-71页 |
| 4.3.4 SiO_2-NPs暴露下斑马鱼卵巢组织lhr基因表达水平的变化情况 | 第71页 |
| 4.3.5 SiO_2-NPs暴露下斑马鱼卵巢组织mbd2基因表达水平的变化情况 | 第71-72页 |
| 4.3.6 Si O_2-NPs暴露下斑马鱼卵巢组织中雌激素受体蛋白LHR表达水平的变化 | 第72页 |
| 4.3.7 SiO_2-NPs暴露下斑马鱼卵巢组织MBD2蛋白表达水平的变化情况 | 第72-73页 |
| 4.4 讨论 | 第73-75页 |
| 4.5 小结 | 第75-76页 |
| 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-87页 |
| 附录 | 第87-88页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
