| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第15-20页 |
| 1 引言 | 第15页 |
| 2 研究现状 | 第15-16页 |
| 3 课题设想 | 第16-19页 |
| 4 课题设计和研究思路 | 第19-20页 |
| 第二章 具有逻辑门特征的纳米药物递送系统的制备及表征 | 第20-44页 |
| 1 仪器设备与制剂 | 第20-22页 |
| 1.1 仪器设备 | 第20-21页 |
| 1.2 试剂 | 第21-22页 |
| 2 制备方法 | 第22-24页 |
| 2.1 dsDNA的制备以及表征 | 第22-23页 |
| 2.1.1 dsDNA的PCR实验 | 第22页 |
| 2.1.2 PCR产物凝胶电泳实验 | 第22-23页 |
| 2.1.3 回收实验 | 第23页 |
| 2.2 中空介孔TiO2的制备 | 第23页 |
| 2.3 氨基化TiO2的制备 | 第23-24页 |
| 2.4 TiO__2@DTX-DNA制剂的制备 | 第24页 |
| 2.4.1 氨基化Ti O2连接双功能交联剂 | 第24页 |
| 2.4.2 载药及连接封孔剂dsDNA | 第24页 |
| 3 纳米制剂的表征 | 第24-27页 |
| 3.1 PCR纯化产物dsDNA的考察 | 第24-25页 |
| 3.1.1 PCR产物纯化后dsDNA的检测 | 第24-25页 |
| 3.1.2 超声下TiO2对dsDNA得剪切实验 | 第25页 |
| 3.1.3 dsDNA与TiO2-NH2-GMBS连接 | 第25页 |
| 3.2 Size粒径分布以及Zeta电位的考察 | 第25页 |
| 3.2.1 粒子Size粒径的测量 | 第25页 |
| 3.2.2 粒子Zeta电位的测量 | 第25页 |
| 3.3 紫外可见光光度仪全波长检测 | 第25-26页 |
| 3.4 傅里叶红外光谱检测 | 第26页 |
| 3.5 TEM透射电子显微镜对各纳米粒子的考察 | 第26页 |
| 3.6 SEM扫描电子显微镜对各纳米粒子的考察 | 第26-27页 |
| 3.7 TiO__2、TiO2@DTX-DNA的孔径大小和比表面积考察 | 第27页 |
| 3.8 TiO__2@DTX-DNA制剂的稳定性考察 | 第27页 |
| 3.9 统计学分析 | 第27页 |
| 4 制剂的体外释放考察 | 第27-28页 |
| 4.1 紫外分光光度法确认DTX检测波长谱 | 第27页 |
| 4.2 建立DTX标准曲线 | 第27-28页 |
| 4.3 测定TiO2@DTX-DNA的载药量 | 第28页 |
| 4.4 TiO__2@DTX-DNA的体外药物释放实验 | 第28页 |
| 4.5 准确度考察 | 第28页 |
| 5 实验结果与讨论 | 第28-43页 |
| 5.1 dsDNA的表征 | 第28-30页 |
| 5.2 TiO__2@DTX-DNA的制备 | 第30-31页 |
| 5.3 电位和粒径的考察 | 第31-32页 |
| 5.4 透射电镜的考察 | 第32-33页 |
| 5.5 扫描电镜的考察 | 第33-34页 |
| 5.6 紫外全波长扫描图谱 | 第34-38页 |
| 5.7 傅里叶红外实验（FT -IR） | 第38-39页 |
| 5.8 N2吸附脱附实验 | 第39-41页 |
| 5.9 制剂稳定性实验 | 第41页 |
| 5.10 制剂体外释放实验 | 第41-43页 |
| 5.11 准确度 | 第43页 |
| 6 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 具有逻辑门特征的纳米药物递送系统的体外抗肿瘤活性 | 第44-59页 |
| 1 仪器与试剂 | 第45-48页 |
| 1.1 仪器设备 | 第45-46页 |
| 1.2 试剂 | 第46页 |
| 1.3 体外抗肿瘤实验有关溶液配制 | 第46-48页 |
| 1.3.1 1%乙酸溶液的配制 | 第46页 |
| 1.3.2 0.4% SRB（Sulforhodamine B）溶液的配制 | 第46-47页 |
| 1.3.3 50% TCA（Trichloroacetic acid）溶液的配制 | 第47页 |
| 1.3.4 Tris（Tris base）碱溶液的配制p H=10.5 | 第47页 |
| 1.3.5 磷酸盐缓冲液（PBS）的配制 | 第47页 |
| 1.3.6 胰酶溶液的配制 | 第47页 |
| 1.3.7 含血清细胞培养基的配制 | 第47页 |
| 1.3.8 细胞冻存液配制 | 第47页 |
| 1.3.9 DAPI染液配制 | 第47页 |
| 1.3.10 FITC（Fluorescein isothiocyanate）溶液的配制 | 第47-48页 |
| 1.3.11 DOX（Doxorubicin）盐酸阿霉素溶液的配制 | 第48页 |
| 1.3.12 DTX（Docetaxel, Taxotere）多西紫杉醇溶液的配制 | 第48页 |
| 2 实验方法 | 第48-51页 |
| 2.1 体外抗肿瘤实验之抑制率实验步骤 | 第48-49页 |
| 2.2 TiO__2及其修饰后产物TiO2-DNA空白载体的细胞毒性检测 | 第49页 |
| 2.3 不同浓度药物DTX的细胞毒性检测 | 第49页 |
| 2.4 不同超声时间的细胞毒性检测 | 第49-50页 |
| 2.5 体外抗肿瘤实验之细胞摄取实验步骤 | 第50页 |
| 2.6 DOX细胞摄取实验 | 第50页 |
| 2.7 FITC细胞摄取实验 | 第50-51页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第51-58页 |
| 3.1 TiO__2及其修饰后产物TiO2-DNA空白载体的细胞毒性检测 | 第51-52页 |
| 3.2 不同浓度药物DTX的细胞毒性检测 | 第52-53页 |
| 3.3 超声时间对细胞毒性的影响 | 第53-54页 |
| 3.4 DOX细胞摄取实验 | 第54-56页 |
| 3.5 FITC细胞摄取实验 | 第56-58页 |
| 4 本章小结 | 第58-59页 |
| 第四章 具有逻辑门特征的纳米药物递送系统的体内研究 | 第59-72页 |
| 1 试剂与仪器 | 第59-61页 |
| 1.1 仪器设备 | 第59页 |
| 1.2 试剂 | 第59-60页 |
| 1.3 体内抗肿瘤活性研究有关试剂的配制 | 第60-61页 |
| 1.3.15%水合氯醛的配制 | 第60页 |
| 1.3.2 IR-783 溶液的配制 | 第60页 |
| 1.3.3 TiO_2@IR-783 溶液的配制 | 第60页 |
| 1.3.4 DTX标准溶液的配制 | 第60页 |
| 1.3.5 TiO_2-NH2-GMBS-DNA溶液的配制 | 第60-61页 |
| 1.3.6 TiO_2@DTX-DNA溶液的配制 | 第61页 |
| 2 实验动物以及S180荷瘤小鼠模型的构建 | 第61-62页 |
| 2.1 实验动物 | 第61页 |
| 2.2 荷瘤小鼠S180模型的建立 | 第61-62页 |
| 3 实验内容 | 第62-64页 |
| 3.1 TiO__2@DTX -DNA药物转运系统在荷瘤小鼠体内分布研究 | 第62-63页 |
| 3.1.1 TiO_2@IR 783 在荷瘤小鼠体内的分布研究 | 第62-63页 |
| 3.2 体内抗肿瘤活性的研究 | 第63-64页 |
| 3.2.1 实验安排 | 第63-64页 |
| 3.2.2 HE（苏木精伊红）染色观察病理变化 | 第64页 |
| 4 结果与分析 | 第64-71页 |
| 4.1 荷瘤小鼠体内TiO2@IR 783 在各组织的分布研究 | 第64-66页 |
| 4.2 肿瘤抑制效果实验 | 第66-71页 |
| 4.2.1 荷瘤小鼠体重和肿瘤体积的变化记录 | 第66-69页 |
| 4.2.2 组织切片HE染色 | 第69-71页 |
| 5 本章小结 | 第71-72页 |
| 第五章 全文总结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-77页 |
| 个人简介 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
