| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 Ⅱ型Metacaspase蛋白（TaeMCAⅡ）在小麦颖果筛分子发育中的定位 | 第13-33页 |
| 1 前言 | 第13-21页 |
| 1.1 细胞程序性死亡研究 | 第13-19页 |
| 1.1.1 Caspase因子 | 第13-14页 |
| 1.1.2 植物细胞程序性死亡 | 第14-19页 |
| 1.1.3 Ca~(2+)信号在细胞程序性死亡中的作用 | 第19页 |
| 1.2 韧皮部筛分子研究进展 | 第19-21页 |
| 1.3 本研究的目的与意义 | 第21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-26页 |
| 2.1 材料培养 | 第21-22页 |
| 2.2 方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 小麦颖果腹部维管组织显微和超微结构观察 | 第22页 |
| 2.2.2 TUNEL标记 | 第22-23页 |
| 2.2.3 TaeMCAII基因的相对表达量检测 | 第23-25页 |
| 2.2.4 原位杂交 | 第25页 |
| 2.2.5 免疫组织化学和免疫超微定位 | 第25-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-30页 |
| 3.1 小麦颖果腹部维管组织显微和超微结构 | 第26-27页 |
| 3.2 小麦颖果腹部维管组织筛分子发育进程中DNA的断裂 | 第27页 |
| 3.3 TaeMCAII在小麦颖果腹部维管组织的相对表达量 | 第27-28页 |
| 3.4 TaeMCAII基因mRNA在小麦颖果腹部筛分子发育中的动态变化 | 第28-29页 |
| 3.5 TaeMCAII的免疫组织化学定位 | 第29页 |
| 3.6 TaeMCAII的免疫电镜定位 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30-33页 |
| 4.1 小麦颖果腹部维管组织中筛分子的发育过程 | 第30页 |
| 4.2 TaeMCAⅡ与小麦颖果筛分子发育过程的关系 | 第30-31页 |
| 4.3 TaeMCAⅡ在小麦颖果筛分子发育后期表达 | 第31-32页 |
| 4.4 研究方法的创新性及不足 | 第32页 |
| 4.5 展望 | 第32-33页 |
| 第2章 小麦腹部维管组织发育中差异蛋白筛选 | 第33-53页 |
| 1 前言 | 第33-36页 |
| 1.1 蛋白质组学定义及研究进展 | 第33页 |
| 1.2 发育蛋白质组学研究进展 | 第33-34页 |
| 1.3 小麦及韧皮部蛋白质组学研究进展 | 第34-35页 |
| 1.4 蛋白质组学研究技术 | 第35-36页 |
| 1.5 本研究的目的与意义 | 第36页 |
| 2 材料与方法 | 第36-44页 |
| 2.1 材料培养 | 第36-37页 |
| 2.2 方法 | 第37-44页 |
| 2.2.1 蛋白质的提取及纯化 | 第37-38页 |
| 2.2.2 蛋白的定量 | 第38页 |
| 2.2.3 蛋白质双向电泳（2-DE） | 第38-41页 |
| 2.2.4 染色 | 第41页 |
| 2.2.5 凝胶的扫描和保存 | 第41-42页 |
| 2.2.6 图像分析 | 第42页 |
| 2.2.7 质谱鉴定 | 第42-44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-50页 |
| 3.1 3DAF、5DAF和7DAF小麦颖果形态特征 | 第44页 |
| 3.2 蛋白质含量标准曲线 | 第44-45页 |
| 3.3 3DAF、5DAF和 7DAF之间的差异蛋白分析 | 第45-50页 |
| 4 讨论 | 第50-53页 |
| 4.1 蛋白质双向电泳技术 | 第50页 |
| 4.2 3 DAF、5 DAF和 7 DAF之间差异蛋白质的分离和鉴定 | 第50-51页 |
| 4.3 下步实验计划 | 第51页 |
| 4.4 研究方法的创新性及不足 | 第51-52页 |
| 4.5 展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-66页 |
| 附录1 论文图版 | 第66-78页 |
| 附录2 在读期间发表和拟发表的文章 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
