| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 第一章 综述 | 第10-22页 |
| 1.1 文昌鱼简介 | 第10页 |
| 1.2 文昌鱼的发现，分布，种类以及生活习性 | 第10-11页 |
| 1.3 研究背景以及研究结果 | 第11-12页 |
| 1.4 超氧化物歧化酶的分类与分布 | 第12-14页 |
| 1.5 SOD的作用机理 | 第14页 |
| 1.6 SOD的功能 | 第14-17页 |
| 1.7 SOD的起源与进化 | 第17-19页 |
| 1.8 SOD的应用 | 第19-20页 |
| 1.9 展望 | 第20-22页 |
| 第2章 青岛文昌鱼铜锌超氧化物歧化酶基因特征与遗传进化分析 | 第22-34页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.1.1.1 主要试剂 | 第22页 |
| 2.1.1.2 主要试剂盒 | 第22页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.1.2.1 总RNA的提取 | 第22-23页 |
| 2.1.2.2 RNA反转录成cDNA | 第23页 |
| 2.1.2.3 目的片段及全序列的获取 | 第23-25页 |
| 2.2 分析与讨论 | 第25-34页 |
| 2.2.1 Cu/Zn-SOD基因序列分析 | 第25-27页 |
| 2.2.2 Cu/Zn-SOD蛋白质的理化性质预测 | 第27-28页 |
| 2.2.3 Cu/Zn-SOD氨基酸序列相似性分析 | 第28-31页 |
| 2.2.4 Cu/Zn-SOD基因序列的系统进化分析 | 第31-34页 |
| 第3章 青岛文昌鱼铜锌超氧化物歧化酶基因的表达 | 第34-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第34-35页 |
| 3.1.1 实验步骤 | 第34页 |
| 3.1.1.1 试剂的配置 | 第34页 |
| 3.1.1.2 探针的合成 | 第34页 |
| 3.1.1.3 文昌鱼石蜡切片的制作 | 第34页 |
| 3.1.1.4 文昌鱼组织切片原位杂交 | 第34页 |
| 3.1.2 实验结果 | 第34-35页 |
| 3.2 分析与讨论： | 第35-38页 |
| 第4章 不同Cu~(2+)浓度对青岛文昌鱼Cu/Zn-SOD基因表达的影响 | 第38-44页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第38-40页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.1.1.1 主要试剂 | 第38页 |
| 4.1.1.2 主要试剂盒 | 第38页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第38-40页 |
| 4.1.2.1 总RNA的提取及cDNA的合成 | 第38页 |
| 4.1.2.2 工作液的配制 | 第38-39页 |
| 4.1.2.3 引物设计 | 第39-40页 |
| 4.2 实验结果 | 第40-42页 |
| 4.3 分析与讨论 | 第42-44页 |
| 第5章 总结与展望 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-59页 |
| 附录 | 第59-70页 |
| 作者简历 | 第70页 |
