| 致谢 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 标记神经环路的方法 | 第13-24页 |
| 1.1 背景 | 第13-14页 |
| 1.2 神经环路标记的手段和方法 | 第14-22页 |
| 1.2.1 传统的标记神经环路的方法 | 第14-15页 |
| 1.2.2 以病毒为工具研究神经环路的方法 | 第15-22页 |
| 1.2.2.1 疱疹病毒科 | 第16-18页 |
| 1.2.2.1.1 伪狂犬病毒 | 第16-17页 |
| 1.2.2.1.2 重组HSV病毒 | 第17-18页 |
| 1.2.2.2 弹状病毒科 | 第18-19页 |
| 1.2.2.2.1 重组RV病毒 | 第18-19页 |
| 1.2.2.2.2 重组VSV病毒 | 第19页 |
| 1.2.2.3 嗜神经病毒标记神经环路的局限性 | 第19-20页 |
| 1.2.2.4 其他病毒系统 | 第20-22页 |
| 1.2.2.4.1 腺相关病毒 | 第20-21页 |
| 1.2.2.4.2 逆转录病毒及慢病毒 | 第21页 |
| 1.2.2.4.3 犬腺病毒 | 第21页 |
| 1.2.2.4.4 塞姆利基森林病毒 | 第21-22页 |
| 1.2.2.5 其他可能用于神经环路研究的病毒 | 第22页 |
| 1.3 总结 | 第22-24页 |
| 第二章 用于解析神经网络的病毒技术的建立和完善 | 第24-39页 |
| 2.1 背景 | 第24页 |
| 2.2 材料和方法 | 第24页 |
| 2.3 结果 | 第24-37页 |
| 2.3.1 特定脑区特定神经元的投射或者非特定神经元的投射 | 第24-25页 |
| 2.3.2 特定区域的直接输入网络 | 第25-26页 |
| 2.3.3 特定区域的多级输入网络 | 第26-27页 |
| 2.3.4 特定区域的多级输出网络 | 第27-29页 |
| 2.3.5 特定区域特定类型神经元的单级输入网络 | 第29-33页 |
| 2.3.6 特定区域特定类型神经元的单级输出网络 | 第33-34页 |
| 2.3.7 特定区域特定类型神经元的多级输出网络 | 第34-36页 |
| 2.3.8 特定两个脑区在全脑的单级和多级输入网络 | 第36-37页 |
| 2.4 总结和讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 习得性绝望和习得性充满希望两种情感对小鼠空间记忆的影响及其神经环路机制 | 第39-60页 |
| 3.1 前言 | 第39页 |
| 3.2 材料和方法 | 第39-45页 |
| 3.2.1 主要仪器 | 第39-40页 |
| 3.2.2 实验动物 | 第40页 |
| 3.2.3 动物模型建立 | 第40-41页 |
| 3.2.4 Thyl-cre转基因小鼠的鉴定 | 第41-43页 |
| 3.2.5 Morris水迷宫(MWM) | 第43页 |
| 3.2.6 Barnes迷宫实验 | 第43-44页 |
| 3.2.7 光遗传学病毒的制备 | 第44页 |
| 3.2.8 逆向跨单突触病毒的制备 | 第44页 |
| 3.2.9 逆向跨单突触实验步骤和BLP—v CA1兴奋性单突触的联系的鉴定 | 第44页 |
| 3.2.10 免疫组化的步骤 | 第44-45页 |
| 3.2.11 病毒脑立体定位注射技术 | 第45页 |
| 3.3 实验结果 | 第45-57页 |
| 3.3.1 LHL和LHF小鼠模型对空间记忆的相反的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.2 LHF和LHL大鼠的海马和杏仁核的活动模式 | 第47-48页 |
| 3.3.3 BLP和vCA1之间的环路结构的鉴定 | 第48-49页 |
| 3.3.4 对照小鼠BLP-vCA1小鼠兴奋性单突触连接的确定 | 第49-51页 |
| 3.3.5 LHL小鼠和LHF小鼠BLP-vCA1通路相反的影响 | 第51-53页 |
| 3.3.6 BLP-vCA1通路的激活是LHF加强空间记忆的必要条件 | 第53页 |
| 3.3.7 激活BLP-vCA1通路改善了LHL诱导的学习和记忆能力减弱 | 第53-54页 |
| 3.3.8 激活BLP-vCA1通路可以了阴性对照小鼠诱导的学习和记忆能力减弱 | 第54-55页 |
| 3.3.9 LHF或者LHL通过BLP-vCA1通路调节了突触后的可塑性 | 第55-57页 |
| 3.4 总结和讨论 | 第57-60页 |
| 第四章 AAV稀疏高亮度标记小鼠的神经元 | 第60-72页 |
| 4.1 引言 | 第60-61页 |
| 4.2 材料和方法 | 第61-64页 |
| 4.2.1 主要仪器和实验动物 | 第61页 |
| 4.2.2 脑立体定位注射方法 | 第61-63页 |
| 4.2.3 fMOST技术以及单个神经元追踪技术 | 第63页 |
| 4.2.4 AAV病毒标记实验方案 | 第63-64页 |
| 4.3 实验结果 | 第64-71页 |
| 4.3.1 稀疏标记病毒实验方法的建立 | 第64-66页 |
| 4.3.2 梨状皮层神经元的精细形态的展示 | 第66-67页 |
| 4.3.3 小鼠前扣带回皮层神经元的精细形态的展示 | 第67-68页 |
| 4.3.4 小鼠海马CA3神经元的精细形态的展示 | 第68-69页 |
| 4.3.5 小鼠前额叶神经元的精细形态的展示 | 第69-70页 |
| 4.3.6 稀疏标记DLO脑区神经元的fMOST成像结果 | 第70-71页 |
| 4.4 稀疏标记结果讨论 | 第71-72页 |
| 第五章 苔藓细胞的精细结构的稀疏标记 | 第72-82页 |
| 5.1 背景 | 第72-73页 |
| 5.2 材料和方法 | 第73-74页 |
| 5.2.1 实验材料和实验器材 | 第73-74页 |
| 5.3 实验结果 | 第74-81页 |
| 5.3.1 小鼠稀疏标记苔藓细胞的分布模式图 | 第74-75页 |
| 5.3.2 苔藓细胞的位置和精细形态 | 第75-76页 |
| 5.3.3 苔藓细胞的树突棘形态和轴突投射 | 第76-78页 |
| 5.3.4 苔藓细胞的树突走向 | 第78-79页 |
| 5.3.5 苔藓细胞的左右投射模式 | 第79-80页 |
| 5.3.6 fMOST技术采集的C57BL/6小鼠苔藓细胞的图像 | 第80-81页 |
| 5.4 讨论 | 第81-82页 |
| 第六章 总结与展望 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-97页 |
| 博士期间发表或完成的文章和专利 | 第97页 |
