| 中英文缩略词表 | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-31页 |
| 1.1 纳米材料概述 | 第15页 |
| 1.2 纳米材料的安全性 | 第15-16页 |
| 1.3 量子点概述及光学特性 | 第16页 |
| 1.4 量子点在生物医学领域的应用 | 第16-18页 |
| 1.4.1 细胞成像 | 第16-17页 |
| 1.4.2 活体动物成像及疾病诊断 | 第17页 |
| 1.4.3 药物筛选和药物分析 | 第17-18页 |
| 1.5 量子点的生物毒性研究 | 第18-19页 |
| 1.5.1 量子点暴露途径 | 第18页 |
| 1.5.2 量子点的体外毒性 | 第18-19页 |
| 1.6 量子点在生物体内的动力学 | 第19-20页 |
| 1.7 量子点的毒性机制 | 第20-22页 |
| 1.7.1 量子点的氧化损伤研究 | 第20页 |
| 1.7.2 量子点对发育的毒性研究 | 第20-21页 |
| 1.7.3 量子点的遗传毒性研究 | 第21-22页 |
| 1.7.4 量子点引起的基因表达变化研究 | 第22页 |
| 1.8 本研究的目的、意义与技术路线 | 第22-24页 |
| 参考文献 | 第24-31页 |
| 第2章 CdSe/ZnS量子点对尼罗罗非鱼胚胎发育的毒性效应 | 第31-45页 |
| 2.1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 2.1.1 实验用试剂与仪器 | 第31-32页 |
| 2.1.2 受精卵获取 | 第32页 |
| 2.1.3 实验设计 | 第32页 |
| 2.1.4 显微观察与数据收集 | 第32页 |
| 2.1.5 抗氧化指标测定 | 第32页 |
| 2.1.6 MT和Hsp70 mRNA定量分析 | 第32-33页 |
| 2.1.7 数据处理 | 第33页 |
| 2.2 结果 | 第33-38页 |
| 2.2.1 尼罗罗非鱼胚胎形态观察 | 第33-34页 |
| 2.2.2 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼胚胎72 hpf30s内心率的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.3 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼胚胎72 hpf孵化抑制率的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.4 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼胚胎的氧化应激作用 | 第36-37页 |
| 2.2.5 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼胚胎MT和Hsp70基因表达的影响 | 第37-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-41页 |
| 2.3.1 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼胚胎发育的影响 | 第38页 |
| 2.3.2 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼胚胎的氧化应激作用 | 第38-39页 |
| 2.3.3 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼胚胎MT与Hsp70基因表达的影响 | 第39-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 第3章 CdSe/ZnS量子点对尼罗罗非鱼遗传毒性效应 | 第45-55页 |
| 3.1 材料与方法 | 第45-48页 |
| 3.1.1 实验用试剂与仪器 | 第45-46页 |
| 3.1.2 实验鱼来源及驯化 | 第46页 |
| 3.1.3 实验设计 | 第46页 |
| 3.1.4 尼罗罗非鱼外周血细胞悬液的制备 | 第46页 |
| 3.1.5 试剂配制 | 第46-47页 |
| 3.1.6 单细胞凝胶电泳方法及DNA损伤检测指标 | 第47页 |
| 3.1.7 DNA损伤各项检测指标 | 第47-48页 |
| 3.1.8 数据处理与分析 | 第48页 |
| 3.2 结果 | 第48-51页 |
| 3.2.1 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼外周血细胞DNA损伤的彗星图像 | 第48-49页 |
| 3.2.2 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼外周血细胞DNA损伤彗尾长度和尾部DNA百分含量的影响 | 第49-50页 |
| 3.2.3 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼外周血细胞DNA损伤尾矩和Olive尾矩的影响 | 第50-51页 |
| 3.3 讨论 | 第51-52页 |
| 3.4 小结 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-55页 |
| 第4章 CdSe/ZnS量子点对尼罗罗非鱼血液生化指标、肝脏及肾脏MT和Hsp70基因表达的影响 | 第55-67页 |
| 4.1 材料与方法 | 第55-58页 |
| 4.1.1 实验用试剂与仪器 | 第55-56页 |
| 4.1.2 实验鱼来源及驯化 | 第56页 |
| 4.1.3 实验设计 | 第56页 |
| 4.1.4 样本的采集 | 第56页 |
| 4.1.5 血液生化指标的检测方法 | 第56页 |
| 4.1.6 基因表达主要试剂的配制和实验前准备 | 第56-57页 |
| 4.1.7 总RNA的提取和cDNA的合成 | 第57页 |
| 4.1.8 cDNA的合成 | 第57-58页 |
| 4.1.9 MT和Hsp70基因Real-Time PCR | 第58页 |
| 4.1.10 数据处理 | 第58页 |
| 4.2 结果 | 第58-60页 |
| 4.2.1 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼血液生化指标的影响 | 第58-59页 |
| 4.2.2 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼肝脏中MT和Hsp70基因表达的影响 | 第59页 |
| 4.2.3 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼肾脏中MT和Hsp70基因表达的影响 | 第59-60页 |
| 4.3 讨论 | 第60-62页 |
| 4.3.1 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼血液生化指标的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.2 CdSe/ZnS QDs对尼罗罗非鱼肝脏、肾脏中MT和Hsp70基因表达的影响 | 第61-62页 |
| 4.4 小结 | 第62-65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 致谢 | 第67-69页 |
| 发表论文和参加科研项目 | 第69页 |
