| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-23页 |
| 1.1 载药微球概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 载药微球的研究现状 | 第12-13页 |
| 1.1.2 载药微球的发展前景 | 第13页 |
| 1.2 壳聚糖材料 | 第13-16页 |
| 1.2.1 壳聚糖结构 | 第13-14页 |
| 1.2.2 壳聚糖性质 | 第14-15页 |
| 1.2.3 壳聚糖用途 | 第15-16页 |
| 1.2.3.1 在医药临床中的应用 | 第15页 |
| 1.2.3.2 在食品工业中的应用 | 第15页 |
| 1.2.3.3 在生化工程中的应用 | 第15-16页 |
| 1.2.3.4 在其他领域中的应用 | 第16页 |
| 1.3 交联剂—京尼平 | 第16-19页 |
| 1.3.1 京尼平与戊二醛的比较 | 第16-17页 |
| 1.3.2 京尼平概述 | 第17-19页 |
| 1.4 模型药物—5-氟尿嘧啶 | 第19-21页 |
| 1.5 给药方式—鼻腔给药 | 第21-22页 |
| 1.6 课题的研究内容及意义 | 第22-23页 |
| 第2章 京尼平联制备壳聚糖微球 | 第23-43页 |
| 2.1 实验主要试剂 | 第23页 |
| 2.2 实验主要仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.3 实验原理 | 第24页 |
| 2.4 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.4.1 微球制备工艺 | 第24页 |
| 2.4.2 单因素实验 | 第24-26页 |
| 2.4.2.1 乳化油相的影响 | 第25页 |
| 2.4.2.2 分离洗涤方式的影响 | 第25页 |
| 2.4.2.3 不同干燥方式的影响 | 第25页 |
| 2.4.2.4 乙酸质量分数的影响 | 第25页 |
| 2.4.2.5 CS浓度的影响 | 第25页 |
| 2.4.2.6 吐温-20乳化剂用量的影响 | 第25-26页 |
| 2.4.2.7 交联时间的影响 | 第26页 |
| 2.4.2.8 交联密度的影响 | 第26页 |
| 2.4.2.9 反应温度的影响 | 第26页 |
| 2.4.2.10 搅拌器转速的影响 | 第26页 |
| 2.4.3 正交实验 | 第26-27页 |
| 2.4.4 微球形貌观察 | 第27页 |
| 2.4.4.1 光学显微镜 | 第27页 |
| 2.4.4.2 环境扫描电镜分析(SEM) | 第27页 |
| 2.4.5 粒径测定 | 第27页 |
| 2.4.6 XRD测定 | 第27-28页 |
| 2.4.7 红外光谱分析(FTIR) | 第28页 |
| 2.5 实验结果与讨论 | 第28-40页 |
| 2.5.1 单因素实验分析 | 第28-37页 |
| 2.5.1.1 不同油相制备壳聚糖微球 | 第28页 |
| 2.5.1.2 分离洗涤方式的优化 | 第28-29页 |
| 2.5.1.3 不同干燥方式的优化 | 第29-30页 |
| 2.5.1.4 乙酸质量分数的优化 | 第30-31页 |
| 2.5.1.5 CS浓度的优化 | 第31-32页 |
| 2.5.1.6 吐温-20乳化剂用量的优化 | 第32-33页 |
| 2.5.1.7 交联时间的优化 | 第33-34页 |
| 2.5.1.8 交联密度的优化 | 第34-35页 |
| 2.5.1.9 反应温度的优化 | 第35-36页 |
| 2.5.1.10 搅拌器转速的优化 | 第36-37页 |
| 2.5.2 正交实验 | 第37-40页 |
| 2.5.2.1 正交实验分析 | 第37-39页 |
| 2.5.2.2 正交验证性实验分析 | 第39-40页 |
| 2.6 粒径分析 | 第40页 |
| 2.7 XRD分析 | 第40-41页 |
| 2.8 红外分析 | 第41-42页 |
| 2.9 本章小结 | 第42-43页 |
| 第3章 5-Fu-壳聚糖微球的制备与研究 | 第43-63页 |
| 3.1 实验主要试剂 | 第43页 |
| 3.2 实验主要仪器与设备 | 第43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-49页 |
| 3.3.1 载药壳聚糖微球的制备 | 第43-44页 |
| 3.3.2 载药微球制备单因素实验 | 第44-46页 |
| 3.3.2.1 反应温度的影响 | 第44页 |
| 3.3.2.2 交联时间的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.2.3 乳化时间的影响 | 第45页 |
| 3.3.2.4 CS浓度的影响 | 第45页 |
| 3.3.2.5 5-Fu用量的影响 | 第45页 |
| 3.3.2.6 京尼平用量的影响 | 第45页 |
| 3.3.2.7 油水比的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.2.8 饱和油相的影响 | 第46页 |
| 3.3.3 样品表征 | 第46-47页 |
| 3.3.3.1 光学显微镜 | 第46页 |
| 3.3.3.2 环境扫描电镜分析(SEM) | 第46页 |
| 3.3.3.3 紫外分光光度计(UV) | 第46页 |
| 3.3.3.4 样品的粒度分布 | 第46页 |
| 3.3.3.5 X-射线衍射(XRD) | 第46-47页 |
| 3.3.3.6 红外光谱分析(FTIR) | 第47页 |
| 3.3.4 5-Fu检测方法的建立 | 第47-48页 |
| 3.3.4.1 5-Fu与壳聚糖微球紫外吸收全波长检测 | 第47-48页 |
| 3.3.4.2 5-Fu标准曲线的绘制 | 第48页 |
| 3.3.4.3 稳定性实验 | 第48页 |
| 3.3.4.4 回收率实验 | 第48页 |
| 3.3.4.5 精密度实验 | 第48页 |
| 3.3.5 载药量与包封率的测定 | 第48-49页 |
| 3.4 实验结果及讨论 | 第49-61页 |
| 3.4.1 5-Fu分析方法 | 第49-50页 |
| 3.4.1.1 5-Fu标准曲线 | 第49页 |
| 3.4.1.2 稳定性实验结果 | 第49-50页 |
| 3.4.1.3 回收率实验结果 | 第50页 |
| 3.4.1.4 精密度实验结果 | 第50页 |
| 3.4.2 单因素实验分析 | 第50-60页 |
| 3.4.2.1 反应温度的优化 | 第50-52页 |
| 3.4.2.2 交联时间的优化 | 第52-53页 |
| 3.4.2.3 乳化时间的优化 | 第53-54页 |
| 3.4.2.4 CS浓度的优化 | 第54-55页 |
| 3.4.2.5 5-Fu用量的优化 | 第55-57页 |
| 3.4.2.6 京尼平用量的优化 | 第57-58页 |
| 3.4.2.7 油水比的优化 | 第58-59页 |
| 3.4.2.8 饱和油相的优化 | 第59-60页 |
| 3.4.3 样品的粒径分析 | 第60页 |
| 3.4.4 样品的XRD分析 | 第60-61页 |
| 3.4.5 样品的IR分析 | 第61页 |
| 3.5 本章小结 | 第61-63页 |
| 第4章 5-Fu壳聚糖微球体外释放的性能考察与研究 | 第63-75页 |
| 4.1 实验主要试剂 | 第63页 |
| 4.2 实验主要仪器与设备 | 第63页 |
| 4.3 实验方法 | 第63-67页 |
| 4.3.1 5-Fu释放介质的选择 | 第63-64页 |
| 4.3.2 壳聚糖体外释放率和溶胀率的测定 | 第64-66页 |
| 4.3.2.1 5-Fu纯药与载药微球体外释放 | 第64页 |
| 4.3.2.2 交联时间对壳聚糖溶胀率与释放率的影响 | 第64-65页 |
| 4.3.2.3 5-Fu用量对壳聚糖溶胀率与释放率的影响 | 第65页 |
| 4.3.2.4 京尼平用量对壳聚糖溶胀率与释放率的影响 | 第65-66页 |
| 4.3.3 5-Fu含量的测定方法 | 第66-67页 |
| 4.3.3.1 5-Fu磷酸缓冲液的配制 | 第66页 |
| 4.3.3.2 稳定性实验 | 第66页 |
| 4.3.3.3 回收率实验 | 第66页 |
| 4.3.3.4 精密度实验及结果 | 第66-67页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第67-74页 |
| 4.4.1 药物含量测定方法 | 第67-68页 |
| 4.4.1.1 5-Fu标准曲线的绘制 | 第67页 |
| 4.4.1.2 稳定性实验结果 | 第67-68页 |
| 4.4.1.3 回收率实验结果 | 第68页 |
| 4.4.1.4 精密度实验结果 | 第68页 |
| 4.4.2 壳聚糖体外释放率和溶胀率的测定结果 | 第68-74页 |
| 4.4.2.1 5-Fu纯药与载药微球体外释放 | 第68-69页 |
| 4.4.2.2 交联时间对壳聚糖溶胀率与释放率的影响 | 第69-71页 |
| 4.4.2.3 5-Fu用量对壳聚糖溶胀率与释放率的影响 | 第71-73页 |
| 4.4.2.4 京尼平用量对壳聚糖溶胀率与释放率的影响 | 第73-74页 |
| 4.5 本章小结 | 第74-75页 |
| 第5章 结论与展望 | 第75-77页 |
| 5.1 结论 | 第75-76页 |
| 5.2 展望 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-82页 |
