| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第13-20页 |
| 1、引言 | 第20-26页 |
| 2、CDH20与结直肠癌临床病理特征的相关性分析 | 第26-42页 |
| 2.1 材料和仪器 | 第26-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-32页 |
| 2.3 实验结果 | 第32-38页 |
| 2.3.1 样本的RNA的检测 | 第32-34页 |
| 2.3.2 53例结直肠癌患者CDH20 RT-qPCR结果 | 第34-36页 |
| 2.3.3 CDH20相对表达与大肠癌临床病理相关性 | 第36-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-41页 |
| 2.5 本部分结论 | 第41-42页 |
| 3、CDH20基因功能的体内外实验研究 | 第42-88页 |
| 3.1 材料及仪器 | 第43-50页 |
| 3.1.1 细胞系及实验动物 | 第43页 |
| 3.1.2 主要试剂及材料 | 第43-45页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第45-46页 |
| 3.1.4 主要自配试剂 | 第46-50页 |
| 3.2 实验方法 | 第50-63页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第50页 |
| 3.2.2 定量RT-qPCR和Western Blot鉴定CDH20在结直肠癌细胞系中的表达 | 第50-54页 |
| 3.2.3 Lentivirus病毒介导CDH20基因高表达SW1116细胞系SW1116-CDH20及对照细胞系SW1116-Mock的构建 | 第54-58页 |
| 3.2.4 Lentivirus病毒介导CDH20基因干扰和筛选及细胞侵染实验 | 第58-59页 |
| 3.2.5 CDH20基因功能体外实验 | 第59-61页 |
| 3.2.6 CDH20基因肝脏转移能力体内实验 | 第61页 |
| 3.2.7 免疫共沉淀实验 | 第61-62页 |
| 3.2.8 免疫荧光实验 | 第62页 |
| 3.2.9 数据统计与分析 | 第62-63页 |
| 3.3 实验结果 | 第63-80页 |
| 3.3.1 CDH20基因在结直肠癌细胞系中的表达情况 | 第63-64页 |
| 3.3.2 CDH20全长基因克隆 | 第64-66页 |
| 3.3.3 过表达细胞系CDH20表达情况 | 第66-68页 |
| 3.3.4 SW1116-CDH20细胞体外培养形态学观察 | 第68-69页 |
| 3.3.5 CDH20高表达对SW1116细胞增殖及克隆形成能力的影响 | 第69-71页 |
| 3.3.6 CDH20抑制肿瘤细胞SW1116与Fibronectin之间的粘附 | 第71-72页 |
| 3.3.7 CDH20敲除细胞系CDH20表达情况 | 第72-73页 |
| 3.3.8 CDH20抑制SW1116细胞迁移和侵袭能力 | 第73-75页 |
| 3.3.9 CDH20抑制肿瘤细胞SW1116在裸鼠体内转移能力 | 第75-76页 |
| 3.3.10 CDH20能抑制SW1116细胞EMT过程 | 第76-78页 |
| 3.3.11 β-catenin可能与CDH20结合,未在核内聚积 | 第78-80页 |
| 3.4 讨论 | 第80-87页 |
| 3.5 本部分结论 | 第87-88页 |
| 4 结论 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-99页 |
| 综述 | 第99-126页 |
| reference | 第111-126页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第126页 |
