摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第16-27页 |
1.1 微管 | 第16-20页 |
1.1.1 微管的基本结构 | 第16页 |
1.1.2 微管的成核作用与组装 | 第16-17页 |
1.1.3 微管动力学特征 | 第17-18页 |
1.1.4 微管的修饰 | 第18页 |
1.1.5 植物微管列阵的类型及功能 | 第18-20页 |
1.2 微管蛋白 | 第20-21页 |
1.3 微管结合蛋白 | 第21-25页 |
1.3.1 SPR1家族 | 第21-22页 |
1.3.2 剑蛋白 | 第22-23页 |
1.3.3 MAP65家族 | 第23页 |
1.3.4 CLASP家族 | 第23-24页 |
1.3.5 EB1家族 | 第24页 |
1.3.6 WVD2家族 | 第24-25页 |
1.4 研究目的和意义 | 第25页 |
1.5 研究目标与内容 | 第25-27页 |
1.5.1 研究目标 | 第25页 |
1.5.2 研究内容 | 第25-27页 |
第二章 柳树微管蛋白基因家族序列、进化与表达分析 | 第27-75页 |
2.1 材料与试剂 | 第28-30页 |
2.1.1 植物材料 | 第28页 |
2.1.2 菌株 | 第28页 |
2.1.3 主要仪器和设备 | 第28页 |
2.1.4 试剂与试剂盒 | 第28-30页 |
2.2 方法与步骤 | 第30-37页 |
2.2.1 数据库搜索与引物设计 | 第30-32页 |
2.2.2 旱柳和龙爪柳总RNA的提取 | 第32-33页 |
2.2.3 cDNA第一链合成 | 第33页 |
2.2.4 逆转录效率的检测 | 第33-34页 |
2.2.5 Tubulin基因家族成员CDS的克隆和测序 | 第34-36页 |
2.2.6 Tubulin基因家族成员的生物信息学分析 | 第36页 |
2.2.7 Tubulin基因家族成员的组织特异性表达分析 | 第36-37页 |
2.3 结果与分析 | 第37-72页 |
2.3.1 钻天柳Tubulin基因家族序列信息与引物 | 第37-39页 |
2.3.2 RNA质量检测 | 第39页 |
2.3.3 逆转录效率 | 第39-40页 |
2.3.4 柳树Tubulin基因家族成员CDS全长序列的克隆与测序 | 第40-42页 |
2.3.5 柳树Tubulin家族成员核酸和氨基酸序列生物信息学分析 | 第42-68页 |
2.3.6 TUA与TUB基因表达模式分析 | 第68-72页 |
2.4 讨论 | 第72-75页 |
第三章 柳树SPR1基因家族序列、表达与功能研究 | 第75-107页 |
3.1 材料与试剂 | 第75-76页 |
3.1.1 植物材料 | 第75页 |
3.1.2 菌株 | 第75页 |
3.1.3 主要仪器和设备 | 第75页 |
3.1.4 试剂与试剂盒 | 第75-76页 |
3.2 方法与步骤 | 第76-88页 |
3.2.1 数据库搜索与引物设计 | 第76页 |
3.2.2 旱柳和龙爪柳总RNA的提取 | 第76页 |
3.2.3 cDNA第一链合成 | 第76页 |
3.2.4 逆转录效率的检测 | 第76-77页 |
3.2.5 SPR1基因家族成员CDS的克隆和测序 | 第77页 |
3.2.6 SPR1基因家族成员的生物信息学分析 | 第77页 |
3.2.7 SPR1基因家族表达模式分析 | 第77-84页 |
3.2.8 SPR1基因家族成员的转基因研究 | 第84-88页 |
3.3 结果与分析 | 第88-105页 |
3.3.1 钻天柳和毛果杨SPR1基因家族成员信息与引物 | 第88页 |
3.3.2 RNA质量检测 | 第88-89页 |
3.3.3 逆转录效率 | 第89页 |
3.3.4 柳树SPR1基因家族成员CDS全长序列的克隆与测序 | 第89-91页 |
3.3.5 柳树SPR1基因家族成员核酸和氨基酸序列生物信息学分析 | 第91-95页 |
3.3.6 柳树SPR1基因家族表达模式 | 第95-100页 |
3.3.7 SPR1基因家族成员的转基因研究 | 第100-105页 |
3.4 讨论 | 第105-107页 |
第四章 结论与展望 | 第107-108页 |
4.1 结论 | 第107页 |
4.2 展望 | 第107-108页 |
参考文献 | 第108-120页 |
在读期间的学术研究 | 第120-121页 |
致谢 | 第121页 |