| 致谢 | 第7-12页 |
| 摘要 | 第12-15页 |
| ABSTRACT | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-39页 |
| 1 植物萃取修复土壤重金属研究现状 | 第18-22页 |
| 1.1 植物萃取修复技术的兴起 | 第18-19页 |
| 1.2 植物萃取修复的限制因素 | 第19-20页 |
| 1.3 促进植物修复的措施 | 第20-22页 |
| 2 促生菌-植物互作在土壤重金属修复中的应用 | 第22-33页 |
| 2.1 植物促生细菌的研究 | 第22-28页 |
| 2.2 促生菌促进植物修复的机理 | 第28-31页 |
| 2.3 植物促生菌群落结构研究 | 第31-33页 |
| 3 组学技术在促生菌-植物联合修复中的应用 | 第33-36页 |
| 3.1 基因组学 | 第33-34页 |
| 3.2 转录组学 | 第34-35页 |
| 3.3 蛋白质组学 | 第35-36页 |
| 4 本研究的意义、内容和技术路线 | 第36-39页 |
| 4.1 研究意义 | 第36-37页 |
| 4.2 主要研究内容 | 第37-38页 |
| 4.3 研究技术路线 | 第38-39页 |
| 第二章 不同土壤类型对超积累东南景天内生菌群落结构的影响 | 第39-53页 |
| 1 引言 | 第39-40页 |
| 2 材料与方法 | 第40-43页 |
| 2.1 土壤 | 第40-41页 |
| 2.2 植物材料 | 第41页 |
| 2.3 土培实验 | 第41页 |
| 2.4 植物收获与样品分析 | 第41页 |
| 2.5 东南景天内生细菌群落结构分析 | 第41-43页 |
| 2.6 数据统计分析 | 第43页 |
| 3 结果与分析 | 第43-51页 |
| 3.1 不同土壤类型对东南景天生物量的影响 | 第43-44页 |
| 3.2 不同土壤类型对东南景天Cd含量与积累量的影响 | 第44-45页 |
| 3.3 植物内生细菌群落结构分析 | 第45-51页 |
| 4 讨论 | 第51-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 第三章 不同促生菌对油菜生长与镉吸收积累的影响 | 第53-70页 |
| 1 引言 | 第53-55页 |
| 2 材料与方法 | 第55-59页 |
| 2.1 重金属耐性植物促生菌的分离 | 第55-56页 |
| 2.2 促生菌的分子鉴定 | 第56页 |
| 2.3 测定促生菌的促生特性 | 第56-57页 |
| 2.4 促生菌的重金属耐性和抗生素耐性 | 第57页 |
| 2.5 镉污染土壤的准备 | 第57页 |
| 2.6 盆栽试验 | 第57-58页 |
| 2.7 细菌定殖检测(FISH) | 第58页 |
| 2.8 细菌定殖检测(GFP) | 第58-59页 |
| 2.9 重金属转运系数,生物富集系数 | 第59页 |
| 2.10 数据分析 | 第59页 |
| 3 结果 | 第59-68页 |
| 3.1 促生菌的分离 | 第59页 |
| 3.2 促生菌的分子鉴定 | 第59页 |
| 3.3 促生菌的促生特性、重金属和抗生素耐性 | 第59-63页 |
| 3.4 促生菌对油菜开花期生长和镉吸收的影响 | 第63-64页 |
| 3.5 促生菌对油菜成熟期生长和镉吸收的影响 | 第64-66页 |
| 3.6 叶片SPAD值 | 第66页 |
| 3.7 促生菌定殖测定 | 第66-68页 |
| 3.8 促生菌对镉TF及BAF的影响 | 第68页 |
| 4 讨论 | 第68-69页 |
| 5 结论 | 第69-70页 |
| 第四章 促生菌对典型土壤镉污染下油菜/东南景天萃取修复效率的影响 | 第70-88页 |
| 1 引言 | 第70-72页 |
| 2 材料与方法 | 第72-75页 |
| 2.1 实验材料 | 第72-73页 |
| 2.2 实验设计 | 第73-74页 |
| 2.3 植物收获与生物量测定 | 第74页 |
| 2.4 土壤重金属有效性及总量测定 | 第74页 |
| 2.5 植物氮磷钾含量测定 | 第74页 |
| 2.6 植物重金属含量测定 | 第74页 |
| 2.7 根际土壤DNA提取及高通量测序 | 第74-75页 |
| 2.8 数据统计分析 | 第75页 |
| 3 结果与分析 | 第75-85页 |
| 3.1 不同土壤中有效性重金属及总量的变化 | 第75-78页 |
| 3.2 不同处理对植物生物量的影响 | 第78页 |
| 3.3 不同处理对植物氮磷钾含量的变化 | 第78-79页 |
| 3.4 不同处理对植物重金属含量及积累量的影响 | 第79-80页 |
| 3.5 不同处理对根际土壤微生物群落结构的影响 | 第80-85页 |
| 4 讨论 | 第85-87页 |
| 4.1 不同土壤对镉生物有效性的影响 | 第85-86页 |
| 4.2 内生菌SaMR12对植物生长及氮磷钾吸收的影响 | 第86页 |
| 4.3 内生菌SaMR12及轮作对镉植物修复的影响 | 第86-87页 |
| 4.4 内生菌SaMR12对植物根际细菌群落结构的影响 | 第87页 |
| 5 结论 | 第87-88页 |
| 第五章 促生菌通过减轻氧化胁迫提商东南景天的镉积累 | 第88-106页 |
| 1 引言 | 第88-89页 |
| 2 材料和方法 | 第89-93页 |
| 2.1 植物收集和培养 | 第89页 |
| 2.2 实验设计 | 第89页 |
| 2.3 镉含量测定 | 第89-90页 |
| 2.4 质膜完整性与丙二醛浓度的测定 | 第90页 |
| 2.5 ROS含量的测定 | 第90页 |
| 2.6 抗氧化酶的测定 | 第90页 |
| 2.7 GSH的测定 | 第90-91页 |
| 2.8 GFP定位 | 第91页 |
| 2.9 基因表达水平分析 | 第91页 |
| 2.10 数据分析 | 第91-93页 |
| 3 结果 | 第93-103页 |
| 3.1 内生菌SaMR12在根部的定殖 | 第93-94页 |
| 3.2 东南景天Cd浓度与积累量 | 第94-95页 |
| 3.3 质膜完整性的测定和MDA含量 | 第95-96页 |
| 3.4 Cd和SaMR12处理对ROS的影响 | 第96-98页 |
| 3.5 抗氧化酶(SOD、CAT、POD)和GSH | 第98-100页 |
| 3.6 抗氧化物与GSH相关基因表达水平 | 第100-103页 |
| 4 讨论 | 第103-105页 |
| 5 结论 | 第105-106页 |
| 第六章 促生菌通过调节转运蛋白基因表达增强金属离子吸收 | 第106-122页 |
| 1 引言 | 第106-107页 |
| 2 材料和方法 | 第107-111页 |
| 2.1 实验设计 | 第107页 |
| 2.2 细菌定殖的测定 | 第107页 |
| 2.3 金属浓度的测定 | 第107页 |
| 2.4 转运因子测算 | 第107-108页 |
| 2.5 光合色素的测定 | 第108页 |
| 2.6 RNA提取和cDNA合成 | 第108页 |
| 2.7 转运蛋白基因转录水平分析 | 第108-111页 |
| 2.8 数据统计 | 第111页 |
| 3 结果 | 第111-118页 |
| 3.1 SaMR12在东南景天根部的定殖 | 第111页 |
| 3.2 东南景天的Cd浓度、积累及转运系数 | 第111-113页 |
| 3.3 Cd和SaMR12对植物金属离子浓度的影响 | 第113页 |
| 3.4 Cd和SaMR12对叶绿素浓度的影响 | 第113-114页 |
| 3.5 Cd和SaMR12对金属转运蛋白基因转录水平的影响 | 第114-118页 |
| 4 讨论 | 第118-121页 |
| 5 结论 | 第121-122页 |
| 第七章 促生菌对重金属污染下东南景天蛋白表达的影响 | 第122-144页 |
| 1 引言 | 第122-123页 |
| 2 材料与方法 | 第123-127页 |
| 2.1 实验材料 | 第123-126页 |
| 2.2 实验设计 | 第126页 |
| 2.3 生物量测定 | 第126页 |
| 2.4 重金属含量测定 | 第126页 |
| 2.5 蛋白质提取 | 第126页 |
| 2.6 iTRAQ实验 | 第126-127页 |
| 3 结果与分析 | 第127-141页 |
| 3.1 接种处理对东南景天生物量的影响 | 第127页 |
| 3.2 接种处理对东南景天重金属含量的影响 | 第127-128页 |
| 3.3 蛋白质组数据分析 | 第128-141页 |
| 4 讨论 | 第141-143页 |
| 4.1 促生菌对东南景天生物量及重金属含量的影响 | 第141页 |
| 4.2 促生菌对东南景天蛋白表达的影响 | 第141-143页 |
| 5 结论 | 第143-144页 |
| 第八章 综合结论、创新点与研究展望 | 第144-146页 |
| 1 综合结论 | 第144-145页 |
| 2 主要创新点 | 第145页 |
| 3 研究展望 | 第145-146页 |
| 参考文献(REFERENCES) | 第146-173页 |
| 攻读博士学位期间主要成果 | 第173-174页 |
