| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-36页 |
| 第一章 核黄素、核黄素结合蛋白和活性氧的研究进展 | 第12-24页 |
| 第一节 核黄素的生物特性 | 第12-17页 |
| 一、核黄素的基本结构特点 | 第12-13页 |
| 二、核黄素及其衍生物的生物合成 | 第13-15页 |
| 三、核黄素、FMN和FAD参与的生理生化过程 | 第15-16页 |
| 四、核黄素参与的生长抗病信号通路 | 第16-17页 |
| 第二节 核黄素结合蛋白的生物学特性及功能 | 第17-19页 |
| 一、核黄素结合蛋白的基本特点 | 第17-18页 |
| 二、核黄素结合蛋白的研究进展 | 第18页 |
| 三、核黄素结合蛋白参与的信号转导 | 第18-19页 |
| 第三节 植物体内活性氧的功能 | 第19-24页 |
| 一、植物体内ROS种类、特点 | 第20-21页 |
| 二、ROS的产生和清除 | 第21-23页 |
| 三、活性氧的信号转导 | 第23-24页 |
| 第二章 Hpa1、H_2O_2和水通道蛋白抗病作用的研究进展 | 第24-36页 |
| 第一节 Harpins的基本特性及生物功能 | 第24-29页 |
| 一、Harpins的遗传特性和分泌特点 | 第24-28页 |
| 二、Harpins蛋白在植物上生理效应 | 第28页 |
| 三、Harpins启动的信号转导通路 | 第28-29页 |
| 第二节 过氧化氢在植物抗病中的作用 | 第29-30页 |
| 一、过氧化氢的防卫信号分子作用 | 第29-30页 |
| 二、H_2O_2参与的信号传导途径 | 第30页 |
| 三、H_2O_2在植物生长和发育过程中的作用 | 第30页 |
| 第三节 水通道蛋白的研究进展 | 第30-36页 |
| 一、水通道蛋白的发现和分类 | 第31-32页 |
| 二、水通道蛋白的基本功能 | 第32-33页 |
| 三、水通道蛋白的结构特点 | 第33-36页 |
| 第二部分 研究报告 | 第36-74页 |
| 第一章 核黄素结合蛋白与核黄素结合改变H_2O_2浓度并影响抗病性 | 第36-52页 |
| 1 材料与方法 | 第37-43页 |
| 1.1 材料准备与处理 | 第37-38页 |
| 1.2 基因表达分析 | 第38-39页 |
| 1.3 RfBP的原核表达与SDS-PAGE及Western blotting分析 | 第39页 |
| 1.4 RfBP生物活性的测定与免疫反应测定 | 第39-40页 |
| 1.5 植物总蛋白提取的提取与His-tags蛋白的纯化 | 第40-41页 |
| 1.6 叶片内黄素含量的测定 | 第41页 |
| 1.7 H_20_2定量测定 | 第41-42页 |
| 1.8 鱼藤酮(rotenone)处理 | 第42页 |
| 1.9 病原菌接种和抗病性评价 | 第42-43页 |
| 2 结果与分析 | 第43-49页 |
| 2.1 核黄素结合蛋白的免疫分析与检测 | 第43-45页 |
| 2.2 转基因拟南芥中RfBP对METCs基因表达的影响 | 第45-48页 |
| 2.3 RfBP对拟南芥抗病性的影响 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-52页 |
| 第二章 Hpa1诱导质外体H_2O_2的产生并影响抗病性 | 第52-74页 |
| 1 材料与方法 | 第54-63页 |
| 1.1 实验材料和植物培养条件 | 第54-56页 |
| 1.2 转基因拟南芥的产生 | 第56-58页 |
| 1.3 病原菌接种和抗病性评价 | 第58-59页 |
| 1.4 免疫定位实验 | 第59-60页 |
| 1.5 DPI药理学实验 | 第60页 |
| 1.6 Hpa1的外施和植物反应实验 | 第60页 |
| 1.7 OsPIP1;3蛋白的位点突变与膜酵母双杂交验证 | 第60-63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-69页 |
| 2.1 Hpa1增强转基因拟南芥的抗病性 | 第63-66页 |
| 2.2 H_2O_2参与了Hpa1转基因拟南芥的抗病过程 | 第66-67页 |
| 2.3 OsPIP1;3中与Hpa1互作位点的鉴定 | 第67-69页 |
| 3 讨论 | 第69-74页 |
| 总结与展望 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-82页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第82页 |
| 合作研究情况说明 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
