| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-24页 |
| 1. 红藻门的生物学特性 | 第13-16页 |
| ·红藻门分类地位与地理分布 | 第13-14页 |
| ·红毛菜科的生物学特征 | 第14页 |
| ·紫菜的研究 | 第14-16页 |
| 2. 红毛菜科植物的分子遗传学研究 | 第16-22页 |
| ·DNA分子标记的应用 | 第16-17页 |
| ·核糖体RNA基因 | 第17-22页 |
| 3. 研究目的及意义 | 第22-24页 |
| ·研究内容 | 第22-23页 |
| ·研究意义 | 第23-24页 |
| 第二章 坛紫菜核糖体基因全长序列及系统发育分析 | 第24-56页 |
| 1. 实验材料、试剂、仪器 | 第24-26页 |
| ·实验材料 | 第24页 |
| ·实验仪器 | 第24-25页 |
| ·实验试剂 | 第25-26页 |
| 2. 实验方法 | 第26-36页 |
| ·坛紫菜基因组DNA的提取 | 第26-27页 |
| ·坛紫菜RNA的提取 | 第27-28页 |
| ·坛紫菜cDNA的合成 | 第28-30页 |
| ·引物的设计和PCR反应 | 第30-33页 |
| ·目的片段的回收 | 第33-34页 |
| ·克隆目的片段 | 第34-35页 |
| ·阳性克隆的检测 | 第35-36页 |
| ·对序列进行生物学分析 | 第36页 |
| 3. 结果与分析 | 第36-52页 |
| ·坛紫菜叶状体基因组DNA的提取 | 第36页 |
| ·以坛紫菜叶状体DNA为模板进行的PCR扩增 | 第36-38页 |
| ·坛紫菜叶状体RNA的提取 | 第38页 |
| ·以cDNA为模板进行PCR扩增 | 第38-39页 |
| ·坛紫菜SSU rDNA的序列分析 | 第39-44页 |
| ·坛紫菜LSU r DNA的序列分析 | 第44-48页 |
| ·坛紫菜 5.8S rDNA和ITS区的序列分析 | 第48-51页 |
| ·坛紫菜IGS区的序列分析 | 第51-52页 |
| 4. 讨论 | 第52-56页 |
| ·SSU rDNA全长序列及其内含子分析 | 第52-53页 |
| ·LSU rDNA全长序列及其内含子分析 | 第53-54页 |
| ·ITS区全长序列分析 | 第54页 |
| ·IGS区全长序列分析 | 第54-56页 |
| 第三章 IGS在条斑紫菜不同品种之间的应用 | 第56-66页 |
| 1. 实验材料及试剂 | 第56-57页 |
| ·实验材料 | 第56页 |
| ·实验试剂 | 第56-57页 |
| 2. 实验方法 | 第57-59页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第57页 |
| ·引物的设计及PCR | 第57-58页 |
| ·对PCR产物进行克隆及测序 | 第58-59页 |
| ·序列分析及系统树的构建 | 第59页 |
| 3. 结果与分析 | 第59-64页 |
| ·四对引物的PCR扩增 | 第59-60页 |
| ·九种条斑紫菜种内IGS序列长度和G+C含量比较分析 | 第60-61页 |
| ·条斑紫菜种内IGS序列比较分析 | 第61-63页 |
| ·条斑紫菜种内IGS序列系统树的构建 | 第63-64页 |
| 4. 讨论 | 第64-66页 |
| 第四章 利用IGS进行条斑紫菜叶状体嵌合性的分子生物学研究 | 第66-76页 |
| 1. 材料与方法 | 第66-67页 |
| ·实验材料 | 第66页 |
| ·实验方法 | 第66-67页 |
| 2. 结果与分析 | 第67-73页 |
| ·条斑紫菜十个片段的DNA为模板的PCR扩增 | 第67-68页 |
| ·序列相似性分析 | 第68-72页 |
| ·遗传物质的组成情况 | 第72-73页 |
| 3 讨论与分析 | 第73-76页 |
| ·条斑紫菜不同个体的差异分析 | 第73页 |
| ·条斑紫菜减数分裂的讨论 | 第73-76页 |
| 结论与创新点 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-88页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |