| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-13页 |
| 综述：生物体内活性氧的产生、清除及相关作用 | 第13-31页 |
| 1 活性氧分子的种类 | 第13-16页 |
| 2 活性氧分子的来源 | 第16-18页 |
| 3 活性氧分子清除机制 | 第18-21页 |
| ·酶依赖型的活性氧清除机制 | 第19-20页 |
| ·非酶依赖型的活性氧清除机制 | 第20-21页 |
| 4 ROS在信号转导途径中的作用 | 第21-22页 |
| 5 病原菌对抗植物ROS | 第22-23页 |
| 6 展望 | 第23页 |
| 参考文献 | 第23-31页 |
| 第一章 ：一个胞内的Cu-Zn SOD和一个分泌型的Catalase帮助禾谷镰孢菌在侵染寄主的过程中抵抗ROS | 第31-78页 |
| 1 引言 | 第31-32页 |
| 2 材料与方法 | 第32-47页 |
| ·小麦品种及种植条件 | 第32页 |
| ·禾谷镰孢菌的培养 | 第32-33页 |
| ·禾谷镰孢菌接种小麦胚芽鞘 | 第33-34页 |
| ·禾谷镰孢菌接种小麦穗部 | 第34页 |
| ·显微观察 | 第34页 |
| ·RNA抽提 | 第34-35页 |
| ·RNA反转录 | 第35-36页 |
| ·大肠杆菌菌株、使用的载体和培养基 | 第36页 |
| ·DNA相关操作 | 第36-39页 |
| ·基因敲除、互补的方法和转化子的验证 | 第39-42页 |
| ·禾谷镰孢菌原生质体的制备和转化 | 第42-43页 |
| ·DAB(diamino benzidine,二氨基联苯胺)染H_2O_2 | 第43-44页 |
| ·平板实验 | 第44页 |
| ·大肠杆菌中蛋白质的表达 | 第44-45页 |
| ·大肠杆菌表达蛋白的纯化 | 第45-46页 |
| ·酶活性测定 | 第46页 |
| ·生物分析软件 | 第46-47页 |
| 3 结果分析 | 第47-65页 |
| ·禾谷镰孢菌侵染寄主小麦胚芽鞘进程的观察 | 第47-48页 |
| ·禾谷镰孢菌侵染胚芽鞘时调高表达了一个胞内Cu-Zn SOD | 第48-50页 |
| ·SOD1帮助禾谷镰孢菌维持体内超氧阴离子平衡 | 第50-51页 |
| ·SOD1是禾谷镰孢菌侵染寄主所必须的 | 第51-54页 |
| ·外源添加过氧化氢使△sod1的孢子萌发速率减缓 | 第54-55页 |
| ·侵染寄主时禾谷镰孢菌必须应对大量H_2O_2 | 第55-56页 |
| ·禾谷镰孢菌侵染胚芽鞘时调高表达了一个分泌型过氧化氢酶 | 第56-58页 |
| ·CAT1帮助禾谷镰孢菌抵抗外界H_2O_2的胁迫 | 第58-60页 |
| ·CAT1是禾谷镰孢菌侵染寄主所必须的 | 第60-62页 |
| ·△cat1侵染胚芽鞘时的DAB染色 | 第62-63页 |
| ·△cat1 sod1双基因突变体的构建及致病力检测 | 第63-65页 |
| 4 讨论 | 第65-69页 |
| 5 参考文献 | 第69-74页 |
| 附录1：本研究中所用的部分引物及用途 | 第74-75页 |
| 附录2：本研究中所有穗部侵染图片 | 第75-78页 |
| 第二章 ：禾谷镰孢菌果胶裂解酶PelA的生物学功能分析 | 第78-96页 |
| 1 引言 | 第78-79页 |
| 2 材料与方法 | 第79-82页 |
| ·实验材料 | 第79-80页 |
| ·实验方法 | 第80-82页 |
| 3 实验结果 | 第82-90页 |
| ·禾谷镰孢菌在侵染小麦胚芽鞘时上调表达了果胶裂解酶 | 第82-86页 |
| ·原核表达PelA | 第86-87页 |
| ·环境因素对PelA活性的影响 | 第87页 |
| ·PelA单基因突变体的构建及致病性检测 | 第87-90页 |
| 4 讨论 | 第90-91页 |
| 5 参考文献 | 第91-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
