| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 第一章 文献综述前言 | 第10-19页 |
| ·研究背景 | 第10-12页 |
| ·生物质能源 | 第10页 |
| ·纤维素资源现状 | 第10页 |
| ·纤维素酶的结构和功能 | 第10-11页 |
| ·纤维素降解微生物的研究进展 | 第11页 |
| ·纤维素降解菌复合系研究现状 | 第11-12页 |
| ·水稻秸秆资源概述 | 第12-16页 |
| ·水稻秸秆资源的现状 | 第12-13页 |
| ·水稻秸秆的利用现状 | 第13-14页 |
| ·水稻秸秆组成 | 第14-15页 |
| ·水稻秸秆预处理的方法 | 第15-16页 |
| ·微生物复合系研究方法 | 第16-17页 |
| ·限制性培养技术 | 第16页 |
| ·DGGE技术 | 第16-17页 |
| ·宏基因组测序技术 | 第17页 |
| ·本论文立题依据、研究目标及技术路线 | 第17-19页 |
| ·立题依据 | 第17页 |
| ·研究目标 | 第17页 |
| ·技术路线 | 第17-19页 |
| 第二章 高效水稻秸秆纤维素降解菌复合系的筛选与驯化 | 第19-26页 |
| ·材料与试剂 | 第19-20页 |
| ·样品采集 | 第19-20页 |
| ·培养基 | 第20页 |
| ·试剂及缓冲液的配置 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-22页 |
| ·复合系初筛 | 第20-21页 |
| ·制备白蚁后肠悬浮液 | 第21页 |
| ·DNS法绘制葡萄糖标准曲线 | 第21页 |
| ·CMCase活力的测定 | 第21-22页 |
| ·结果与分析 | 第22-24页 |
| ·复合系筛选和驯化 | 第22-23页 |
| ·绘制葡萄糖标准曲线 | 第23页 |
| ·CMC酶活的测定 | 第23-24页 |
| ·讨论 | 第24-26页 |
| 第三章 复合系I-D发酵条件优化 | 第26-35页 |
| ·材料与试剂 | 第26页 |
| ·实验材料 | 第26页 |
| ·培养基 | 第26页 |
| ·试剂及缓冲液的配置 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-27页 |
| ·减重法测定水稻秸秆失重率 | 第26页 |
| ·复合系纤维素降解条件的单因素实验 | 第26-27页 |
| ·响应面法优化纤维素降解条件 | 第27页 |
| ·结果与分析 | 第27-33页 |
| ·单因素实验结果 | 第27-29页 |
| ·BBD试验建立回归方程 | 第29-32页 |
| ·响应曲面的拟合以及最佳操作点的确定 | 第32-33页 |
| ·验证试验 | 第33页 |
| ·讨论 | 第33-35页 |
| 第四章 复合系I-D对水稻秸秆的降解特性研究 | 第35-42页 |
| ·材料与试剂 | 第35页 |
| ·实验材料 | 第35页 |
| ·培养基 | 第35页 |
| ·试剂及缓冲液的配置 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-37页 |
| ·复合系I-D纤维素降解能力的验证 | 第35页 |
| ·水稻秸秆成分降解率的测定 | 第35-36页 |
| ·水稻秸秆降解过程总糖含量测定 | 第36-37页 |
| ·结果与分析 | 第37-40页 |
| ·长水稻秸秆降解效果 | 第37-38页 |
| ·水稻秸秆主要组成成分降解率 | 第38-39页 |
| ·发酵过程可溶性总糖含量 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 第五章 复合系I-D中单菌落分离及鉴定 | 第42-52页 |
| ·材料与试剂 | 第42页 |
| ·实验材料 | 第42页 |
| ·培养基 | 第42页 |
| ·试剂及缓冲液的配置 | 第42页 |
| ·实验方法 | 第42-46页 |
| ·单菌落的分离 | 第42页 |
| ·菌落功能筛选 | 第42-43页 |
| ·细菌革兰氏染色 | 第43页 |
| ·细菌16 S rDNA序列鉴定 | 第43-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-50页 |
| ·单菌落的分离结果 | 第46页 |
| ·菌落功能筛选结果 | 第46-47页 |
| ·单菌落D6生物学特性 | 第47-48页 |
| ·单菌落D6 16S rDNA序列鉴定结果 | 第48-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 第六章 结论、创新点及下一步工作计划 | 第52-54页 |
| ·全文结论 | 第52页 |
| ·创新点 | 第52页 |
| ·下一步工作计划 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 附录 | 第61-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64页 |