| 导师介绍 | 第1页 |
| 课题组成员 | 第5-8页 |
| 摘要 | 第8-12页 |
| ABSTRACT | 第12-17页 |
| 符号说明 | 第17-18页 |
| 前言 | 第18-24页 |
| 1. APN 简介 | 第18-19页 |
| 2. APN 与结肠癌 | 第19-21页 |
| 3. APN 的配体 | 第21页 |
| 4. 5-氟尿嘧啶（5-FU）的促凋亡作用 | 第21-24页 |
| 实验部分 | 第24-38页 |
| 1. 实验材料 | 第24-28页 |
| ·化合物 | 第24页 |
| ·细胞株及培养 | 第24页 |
| ·实验动物 | 第24页 |
| ·试剂和相关材料 | 第24-25页 |
| ·试剂配制 | 第25-26页 |
| ·主要仪器设备 | 第26-28页 |
| 2. 实验方法 | 第28-37页 |
| ·MTT 实验 | 第28页 |
| ·克隆形成实验 | 第28页 |
| ·Hoechst 33342 染色 | 第28-29页 |
| ·JC-1 检测人结肠癌 Colo205 细胞中线粒体膜电位（Δ_(ψm)） | 第29页 |
| ·Annexin V/PI 双染法检测人结肠癌 Colo205 细胞凋亡 | 第29-30页 |
| ·免疫荧光流式细胞仪检测人结肠癌 Colo205 细胞中 APN 的表达 | 第30页 |
| ·Western blotting 检测人结肠癌 Colo205 细胞中 APN 的表达 | 第30-31页 |
| ·人结肠癌 Colo205 移植瘤裸鼠模型的建立 | 第31页 |
| ·TUNEL 检测人结肠癌 Colo205 细胞凋亡 | 第31-32页 |
| ·Western blotting 检测 Colo205 移植瘤组织相关凋亡蛋白及APN 表达 | 第32页 |
| ·免疫组化法测定 Bax、Bcl-2 以及 APN 表达 | 第32-33页 |
| ·全自动血液分析仪检测 Colo205 移植瘤裸鼠外周血的变化 | 第33页 |
| ·DCFH-DA 检测 Colo205 细胞及移植瘤组织中 ROS 水平 | 第33-34页 |
| ·WST-1 法检测人 Colo205 细胞及组织匀浆上清中 SOD | 第34-35页 |
| ·RT-PCR 检测 Colo205 抑制瘤组织 Nox1 和 MnSOD mRNA的表达 | 第35-37页 |
| 3. 统计学分析 | 第37-38页 |
| 实验结果 | 第38-55页 |
| 1. 13F-1 对人结肠癌 Colo205 细胞生长抑制作用 | 第38-39页 |
| 2. 13F-1 对 Colo205 移植瘤生长的抑制作用 | 第39-42页 |
| 3. 13F-1 诱导人结肠癌 Colo205 细胞凋亡 | 第42-44页 |
| 4. 13F-1 对 Colo205 细胞线粒体膜电位（Δψm）的影响 | 第44页 |
| 5. 13F-1 对 Colo205 移植瘤组织中细胞的凋亡的影响 | 第44-45页 |
| 6. 13F-1 对 Colo205 移植瘤组织中凋亡相关蛋白表达的影响 | 第45-48页 |
| 7. 13F-1 对 Colo205 细胞及移植瘤组织中 APN 的抑制作用 | 第48-51页 |
| 8. 13F-1 对 Colo205 移植瘤组织中外周血的影响 | 第51页 |
| 9. 13F-1 对 Colo205 细胞及移植瘤组织中 ROS 及 SOD 的影响 | 第51-53页 |
| 10. 13F-1 对 Colo205 移植瘤组织中 Nox1 和 MnSOD mRNA 表达的影响 | 第53-55页 |
| 讨论 | 第55-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 综述 | 第67-77页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文 | 第77-109页 |
| 致谢 | 第109页 |
