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CD133及ALDH在肿瘤侵袭中的作用及机制研究

中文摘要第1-10页
ABSTRACT第10-13页
第一部分 CD133对结直肠癌侵袭能力的作用研究及机制探讨第13-56页
 引言第14-17页
 实验材料第17-22页
 实验方法第22-36页
  1. 细胞培养第22页
  2. 细胞总蛋白的提取第22页
  3. BCA法检测蛋白浓度第22-23页
  4. Real Time PCR第23-26页
  5. Western Blotting第26-27页
  6. 细胞CD133~+率分析及CD133~(high)、CD133~(low)分选第27-28页
  7. MTT法检测细胞增殖第28页
  8. 细胞集落形成率测定第28页
  9. Transwell体外侵袭实验第28-29页
  10. siRNA干扰CD133或TIMP2的表达第29-30页
  11. MMP2明胶酶谱检测第30-31页
  12. 质粒转化、扩增第31页
  13. CD133 shRNA表达载体构建第31-34页
  14. 慢病毒包装第34页
  15. 慢病毒感染目的细胞及稳定细胞株筛选第34-35页
  16. 统计学方法第35-36页
 实验结果第36-50页
  1. CD133在六种结直肠癌细胞系中的表达第36-37页
   ·流式细胞术检测CD133在六种结肠癌细胞系中的表达情况第36页
   ·Western blotting检测CD133在六种结肠癌细胞系中的表达情况第36-37页
  2. CD133~(high)亚群比CD133~(low)亚群具有更高的体外增殖能力与侵袭能力第37-39页
   ·流式细胞术分选CD133~(high)与CD133~(low)细胞并检测分选纯度第37页
   ·CD133~(high)亚群比CD133~(low)亚群具有更高的体外增殖能力第37-38页
   ·CD133~(high)亚群比CD133~(low)亚群具有更强的集落形成能力第38页
   ·CD133~(high)比CD133~(low)亚群具有更强的体外侵袭能力第38-39页
  3. siRNA下调CD133后降低了HCT116细胞的侵袭能力第39-41页
   ·siRNA可有效下调HCT116细胞中CD133的表达第39-40页
   ·siRNA下调CD133后对HCT116细胞增殖能力没有影响第40-41页
   ·siRNA下调CD133后降低了HCT116细胞的体外侵袭能力第41页
  4. CD133的下调影响TIMP-2的表达第41-44页
   ·侵袭转移相关信号通路分子筛查第41-42页
   ·敲低CD133可使TIMP-2表达明显降低第42-43页
   ·TIMP-2在CD133~(high)及CD133~(low)HCT116细胞中的表达没有区别第43页
   ·敲低CD133对MMP及TIMP家族其他成员的影响第43-44页
  5. siRNA下调TIMP-2后对CD133表达无影响且可以降低细胞的体外侵袭能力第44-47页
   ·siRNA可以有效下调TIMP-2的表达第44-45页
   ·siRNA下调TIMP-2后对CD133表达没有影响第45-46页
   ·siRNA下调TIMP-2后对细胞的体外增殖能力没有影响第46页
   ·siRNA下调TIMP-2后可降低细胞的体外侵袭能力第46-47页
  6. MMP2及MEK/ERK通路不参与CD133及TIMP-2对细胞的影响第47-48页
  7. CD133 shRNA表达载体的构建及CD133稳定敲低细胞系的建立第48-50页
 讨论第50-55页
 小结第55-56页
第二部分:ALDH对肿瘤细胞生物学特性的作用研究第56-90页
 引言第57-59页
 实验材料第59-63页
 实验方法第63-72页
  1. 细胞培养第63页
  2. 细胞总蛋白的提取第63页
  3. BCA法检测蛋白浓度第63-64页
  4. Real Time PCR第64-66页
  5. Western Blotting第66-67页
  6. 细胞ALDH~+率分析及ALDH~(high)、ALDH~(low)分选第67-68页
  7. MTT法及CCK8检测细胞增殖第68-69页
  8. 细胞集落形成率测定第69页
  9. Transwell体外侵袭实验第69-70页
  10. siRNA干扰ALDH1A1或ALDH1A3的表达第70页
  11. 细胞免疫化学染色第70-71页
  12. 流式检测细胞周期第71页
  13. 细胞凋亡检测第71页
  14. 统计学方法第71-72页
 实验结果第72-85页
  1. 流式检测ALDH在几种结肠癌及肺癌细胞系中的表达第72-73页
  2. ALDH~(high)与ALDH~(low)细胞的生物学特点第73-76页
   ·HCT116/A549细胞中ALDH~(high)与ALDH~(low)细胞的分选第73页
   ·HCT116/A549细胞中ALDH~(high)与ALDH~(low)细胞的体外生长的差别第73-74页
   ·HCT116细胞中ALDH~(high)与ALDH~(low)细胞的集落形成能力差别第74页
   ·HCT116细胞中ALDH~(high)与ALDH~(low)细胞周期的差别第74-75页
   ·HCT116细胞中ALDH~(high)与ALDH~(low)细胞再培养第75页
   ·HCT116细胞中ALDH~(high)与ALDH~(low)细胞的体外侵袭能力的观察第75-76页
  3. ALDH1A1及ALDH1A3在几种结肠癌细胞中的表达情况第76-78页
   ·Western boltting检测ALDH1A1及ALDH1A3在几种结肠癌及肺癌细胞系中的表达情况第76-77页
   ·间接免疫荧光检测ALDH1A1及ALDH1A3在HCT116/A549细胞中的表达情况第77-78页
  4. siRNA下调ALDH1A1及ALDH1A3对HCT116/A549细胞的影响第78-85页
   ·siRNA可有效下调ALDH1A1及ALDH1A3的表达第78页
   ·siRNA下调ALDH1A3或ALDH1A1后对HCT116/A549中ALDH~+细胞比例的影响第78-79页
   ·siRNA下调ALDH1A1及ALDH1A3后对HCT116/A549细胞凋亡没有影响第79-80页
   ·siRNA下调ALDH1A3后对HCT116增殖能力没有影响第80-81页
   ·siRNA下调ALDH1A1及ALDH1A3后对A549的增殖能力有不同影响第81页
   ·siRNA下调ALDH1A3后对A549细胞周期的影响第81页
   ·siRNA下调ALDH1A3后能降低HCT116的体外侵袭能力第81-82页
   ·siRNA下调ALDH1A3后能降低A549的体外侵袭能力第82-83页
   ·siRNA下调ALDH1A3后能降低HCT116细胞对CoCL_2模拟的低氧环境的耐受第83-85页
 讨论第85-89页
 小结第89-90页
第三部分:小鼠树突状细胞肉瘤中SRS19-6MULV病毒的检测及致病机理研究第90-106页
 引言第91-92页
 实验材料第92-94页
 实验方法第94-98页
  1. 细胞培养第94页
  2. 培养细胞及组织基因组DNA提取第94-95页
  3. PCR扩增目的片段第95页
  4. PCR产物胶回收第95-96页
  5. 透射电镜检测DCS及SRSV/3T3细胞中有无病毒颗粒第96页
  6. IPCR方法检测SRS19-6MuLV病毒在DCS及SRSV/3T3基因组中的插入位点第96-97页
  7. 序列及插入位点生物信息学分析第97-98页
 实验结果第98-103页
  1. DCS及其他小鼠肿瘤细胞中SRS19-6MuLV病毒的检测结果第98页
  2. 小鼠正常组织、细胞中SRS19-6MuLV病毒的检测结果第98-99页
  3. 小鼠瘤株及SRSV/3T3细胞中SRS19-6MuLV病毒的检测结果第99-100页
  4. 人肿瘤细胞中SRS19-6MuLV病毒的检测结果第100页
  5. 透射电镜检测病毒颗粒第100-101页
  6. SRS19-6MuLV病毒在DCS细胞及SRSV/3T3细胞中插入位点第101页
  7. 序列及插入位点生物信息学分析第101-103页
 讨论第103-105页
 小结第105-106页
参考文献第106-114页
缩略语第114-116页
文献综述第116-132页
 参考文献第126-132页
附录:已发表文章第132-134页
致谢第134-135页
个人简历第135-136页

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