离子注入盐生杜氏藻高产β-胡萝卜素突变株筛选及细胞固定化技术研究
| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 目录 | 第6-8页 |
| 插图和附表清单 | 第8-10页 |
| 一、文献综述 | 第10-19页 |
| ·β-胡萝卜素研究进展 | 第10-13页 |
| ·β-胡萝卜素简介 | 第10-11页 |
| ·β-胡萝卜素在自然界的分布 | 第11页 |
| ·β-胡萝卜素的生产方法 | 第11-12页 |
| ·β-胡萝卜素的应用前景 | 第12页 |
| ·β-胡萝卜素的提取方法 | 第12页 |
| ·β-胡萝卜素的检测方法 | 第12-13页 |
| ·杜氏盐藻产β-胡萝卜素机制 | 第13-14页 |
| ·盐藻简介 | 第13页 |
| ·盐藻中β-胡萝卜素的代谢途径 | 第13-14页 |
| ·离子束生物工程学研究进展 | 第14-17页 |
| ·低能离子与生物体系相互作用的生物效应 | 第14-15页 |
| ·离子束诱变在作物育种上的应用 | 第15-16页 |
| ·离子束诱变在微生物育种上的应用 | 第16页 |
| ·杜氏盐藻诱变的研究 | 第16-17页 |
| ·单粒子辐射研究进展 | 第17-19页 |
| ·微束简介 | 第17页 |
| ·单粒子与生物体系相互作用的生物学效应 | 第17-19页 |
| 二、引言 | 第19-21页 |
| ·研究价值和意义 | 第19-20页 |
| ·技术路线 | 第20-21页 |
| ·离子束诱变选育技术路线 | 第20页 |
| ·盐藻单细胞固定技术路线 | 第20-21页 |
| 三、材料与方法 | 第21-26页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·试验藻种 | 第21页 |
| ·培养基 | 第21页 |
| ·仪器与试剂 | 第21页 |
| ·方法 | 第21-26页 |
| ·实验方法 | 第22页 |
| ·低能离子注入诱变选育方法 | 第22-23页 |
| ·β-胡萝卜素提取与测定 | 第23页 |
| ·叶绿素提取与测定 | 第23页 |
| ·盐藻单细胞固定化方法 | 第23-26页 |
| 四、结果与分析 | 第26-45页 |
| ·盐藻生长曲线 | 第26-27页 |
| ·盐藻细胞密度与光密度值(OD)对应关系 | 第27页 |
| ·β—胡萝卜素标准曲线 | 第27-28页 |
| ·杜氏盐藻离子束诱变及突变体选育 | 第28-36页 |
| ·甘油对藻细胞的保护作用研究 | 第28-29页 |
| ·氢离子对存活率的影响 | 第29-30页 |
| ·氩离子注入剂量与突变率的关系 | 第30页 |
| ·氩离子注入藻细胞突变体筛选 | 第30-32页 |
| ·突变藻株遗传稳定性考察 | 第32页 |
| ·突变体分析 | 第32-36页 |
| ·细胞固定化技术的研究 | 第36-45页 |
| ·细胞固定中细胞条件优化 | 第36-39页 |
| ·实验室条件下细胞生长的NaCl含量优化 | 第39页 |
| ·固定试剂的优化 | 第39-43页 |
| ·细胞染色条件确定 | 第43页 |
| ·固定细胞洗脱条件优化 | 第43-45页 |
| 五、讨论 | 第45-48页 |
| ·甘油对离子注入细胞的保护作用 | 第45页 |
| ·低能离子注入盐藻的生物学校应 | 第45-46页 |
| ·FDA/PI荧光染色 | 第46页 |
| ·固定细胞洗脱 | 第46-48页 |
| 六、结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者简介 | 第54页 |
