| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-19页 |
| ·杨树组织培养的研究进展 | 第11-14页 |
| ·杨树组织培养的历史和现状 | 第11-12页 |
| ·杨树组织培养过程中的影响因子 | 第12-14页 |
| ·杨树遗传转化技术 | 第14-16页 |
| ·农杆菌介导法 | 第14-15页 |
| ·外源DNA直接导入法 | 第15-16页 |
| ·与植物铁元素相关的蛋白和基因及其转化的研究进展 | 第16-19页 |
| ·植物根系吸收铁的机制 | 第16-17页 |
| ·铁在植物体内的运输 | 第17页 |
| ·与植物铁元素营养相关的基因和蛋白 | 第17-19页 |
| 2 引言 | 第19-22页 |
| ·本课题的研究意义 | 第19页 |
| ·本研究的内容、目标 | 第19-20页 |
| ·研究内容 | 第20页 |
| ·研究目标 | 第20页 |
| ·本研究采用的技术路线 | 第20-22页 |
| 3 材料和方法 | 第22-36页 |
| ·实验材料 | 第22-23页 |
| ·植物材料 | 第22页 |
| ·菌株和质粒 | 第22-23页 |
| ·NASHOR1基因PCR反应的引物 | 第23页 |
| ·主要仪器设备和试剂 | 第23-25页 |
| ·主要仪器设备 | 第23-24页 |
| ·主要试剂 | 第24页 |
| ·有关试剂和培养基的配制 | 第24-25页 |
| ·试验方法 | 第25-35页 |
| ·杨树叶片再生体系的建立 | 第25-26页 |
| ·杨树叶片分化、不定芽生根的卡那霉素敏感性试验 | 第26-27页 |
| ·农杆菌介导的杨树遗传转化体系的研究 | 第27-31页 |
| ·NASHOR1基因表达载体的构建 | 第31-34页 |
| ·外源NASHOR1基因对南林95杨遗传转化的研究 | 第34页 |
| ·转化植株的PCR检测 | 第34-35页 |
| ·统计方法及所使用的软件 | 第35-36页 |
| 4 结果与分析 | 第36-49页 |
| ·杨树叶片再生体系的建立 | 第36-42页 |
| ·不同处理对外植体消毒效果的影响 | 第36页 |
| ·3个杨树品种愈伤组织诱导效果的对比性试验 | 第36-38页 |
| ·估算3个品种叶片上、下表皮气孔密度比 | 第38页 |
| ·叶片上的不同部分及放置方式对愈伤组织诱导效果的影响 | 第38-39页 |
| ·不同培养基对3个品种愈伤组织诱导分化的影响及其对比性研究 | 第39-41页 |
| ·不同组合的植物激素对杨树叶片不定芽诱导的影响 | 第41页 |
| ·不同浓度的NAA和IBA对3个品种试管苗生根的影响 | 第41-42页 |
| ·南林95杨卡那霉素敏感性试验 | 第42-43页 |
| ·南林95杨叶片分化的卡那霉素敏感性试验 | 第42-43页 |
| ·南林95杨不定芽生根的卡那霉素敏感性试验 | 第43页 |
| ·农杆菌介导的杨树遗传转化体系的建立 | 第43-46页 |
| ·E.coli DH5α的pBIl21-GUS质粒提取及酶切鉴定 | 第43-44页 |
| ·农杆菌LBA4404的质粒提取及酶切鉴定 | 第44页 |
| ·采用均匀设计建立农杆菌介导下的杨树最优转化体系 | 第44-46页 |
| ·NASHOR1基因pBI121-NASHOR1表达载体的构 | 第46-47页 |
| ·pBI121载体与NASHOR1基因片段的酶切与连接 | 第46页 |
| ·重组质粒的转化与鉴定 | 第46-47页 |
| ·转化植株的PCR检测 | 第47-49页 |
| ·杨树基因组DNA的提取 | 第47页 |
| ·PCR检测 | 第47-49页 |
| 5 讨论 | 第49-52页 |
| ·杨树叶片再生体系的建立 | 第49页 |
| ·Kan筛选临界浓度的确定 | 第49-50页 |
| ·农杆菌介导的杨树遗传转化体系的建立 | 第50-51页 |
| ·菌液浓度和浸染时间 | 第50页 |
| ·共培养时间和乙酰丁香酮(AS)浓度 | 第50-51页 |
| ·pBI121-NASHOR1表达载体的构建 | 第51-52页 |
| 6 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-62页 |
| 附图 | 第62-65页 |
| 附录 | 第65-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 个人简介 | 第82页 |
| 在读期间发表的论文 | 第82页 |
