| 中文摘要 | 第1-17页 |
| 英文摘要 | 第17-24页 |
| 符号说明 | 第24-27页 |
| 研究背景 | 第27-33页 |
| 第一章 岩青兰黄酮的抗氧化作用研究 | 第33-47页 |
| 摘要 | 第33页 |
| 前言 | 第33-36页 |
| 实验材料 | 第36-37页 |
| 1.岩青兰黄酮 | 第36页 |
| 2.大鼠心肌细胞株 | 第36页 |
| 3.试剂 | 第36-37页 |
| 4.仪器 | 第37页 |
| 实验方法 | 第37-39页 |
| 1.心肌细胞培养 | 第37-38页 |
| 2.MTT法检测细胞活力 | 第38页 |
| ·细胞加药分组培养 | 第38页 |
| ·不同浓度岩青兰黄酮预孵育对心肌细胞活力的影响 | 第38页 |
| ·不同浓度岩青兰黄酮预孵育对阿霉素损伤的心肌细胞活力的影响 | 第38页 |
| 3.不同浓度柚皮素-7-O-葡萄糖苷对阿霉素损伤的心肌细胞活力影响的时效关系研究 | 第38页 |
| 4.柚皮素7-O-葡萄糖苷对心肌细胞SOD,CAT活性,MDA和GSH-Px含量的测定 | 第38-39页 |
| 5.数据处理 | 第39页 |
| 结果 | 第39-44页 |
| 1.光学显微镜观察 | 第39-40页 |
| 2.五种岩青兰黄酮对培养心肌细胞活力的影响 | 第40-41页 |
| ·不同浓度岩青兰黄酮预孵育对心肌细胞活力的影响 | 第40页 |
| ·不同浓度岩青兰黄酮预孵育对阿霉素损伤的心肌细胞活力的影响 | 第40-41页 |
| 3.不同浓度柚皮素-7-O-葡萄糖苷对阿霉素损伤的心肌细胞保护作用的时效关系研究 | 第41-42页 |
| 4.柚皮素7-O-葡萄糖苷对心肌细胞SOD、CAT和GSH-Px活性,GSH和MDA含量的影响 | 第42-44页 |
| 讨论 | 第44-46页 |
| 小结 | 第46-47页 |
| 第二章 柚皮素7-O-葡萄糖苷对心肌细胞凋亡的保护作用研究 | 第47-66页 |
| 摘要 | 第47页 |
| 前言 | 第47-49页 |
| 实验材料 | 第49-51页 |
| 1.柚皮素-7-O-葡萄糖苷 | 第49页 |
| 2.大鼠心肌细胞及培养 | 第49页 |
| 3.试剂 | 第49-50页 |
| 4.部分试剂配置方法 | 第50-51页 |
| 5.仪器 | 第51页 |
| 实验方法 | 第51-55页 |
| 1.细胞凋亡形态的检测 | 第51-52页 |
| ·倒置显微镜观察 | 第51页 |
| ·荧光显微镜观察 | 第51-52页 |
| 2.流式细胞仪分析-磷脂酰丝氨酸外翻分析(Annxein V法) | 第52页 |
| 3.琼脂糖凝胶电泳分析 | 第52页 |
| 4.RT-PCR检测心肌细胞Caspase-3,Caspase-9,Bcl-2和HO-1mRNA的表达 | 第52-53页 |
| ·Trizol提取总RNA | 第52-53页 |
| ·RT-PCR | 第53页 |
| ·PCR产物分析 | 第53页 |
| 5.Western blot检测Bcl-2,HO-1蛋白表达 | 第53-54页 |
| ·蛋白抽提及定量 | 第53页 |
| ·Western blot | 第53-54页 |
| 6.对细胞内Ca~(2+)的影响 | 第54页 |
| 7.统计学方法 | 第54-55页 |
| 结果 | 第55-62页 |
| 1.细胞凋亡的形态学检测 | 第55-56页 |
| ·瑞氏-吉姆萨染色法观察细胞凋亡的形态学变化 | 第55页 |
| ·荧光染料Hoechst 33258染色观察细胞凋亡的形态学变化 | 第55-56页 |
| 2.琼脂糖凝胶电泳分析(DNA ladder) | 第56-57页 |
| 3.Annexin V-FITC/PI双标记流式细胞术检测心肌细胞凋亡 | 第57-58页 |
| 4.柚皮素-7-O-葡萄糖苷对阿霉素损伤的心肌细胞Caspase-3,Caspase-9,Bcl-2和HO-1 mRNA表达的影响 | 第58-61页 |
| 5.柚皮素-7-O-葡萄糖苷对阿霉素损伤的心肌细胞Bcl-2和HO-1蛋白表达的影响 | 第61页 |
| 6.柚皮素-7-O-葡萄糖苷对阿霉素损伤的心肌细胞内Ca~(2+)浓度的影响 | 第61-62页 |
| 讨论 | 第62-65页 |
| 小结 | 第65-66页 |
| 第三章 柚皮素-7-O-葡萄糖苷对心肌细胞内二相酶的诱导及机理研究 | 第66-77页 |
| 摘要 | 第66页 |
| 前言 | 第66-68页 |
| 实验材料 | 第68-69页 |
| 1.柚皮素-7-O-葡萄糖苷 | 第68页 |
| 2.大鼠心肌细胞及培养 | 第68页 |
| 3.试剂 | 第68-69页 |
| 实验方法 | 第69-70页 |
| 1.RT-PCR检测二相酶NQO1,GCLC,GCLM的mRNA表达 | 第69页 |
| 2.Western blot检测二相酶NQO1的蛋白表达 | 第69页 |
| 3.利用western blot观察对Nrf2核转位和ERK1/2的磷酸化的影响 | 第69-70页 |
| ·细胞核蛋白抽提及定量 | 第69-70页 |
| ·Western blot检测对Nrf2核转位和ERK1/2的磷酸化的影响 | 第70页 |
| 4.统计学方法 | 第70页 |
| 结果 | 第70-73页 |
| 1.RT-PCR检测二相酶NQO1,GCLC,GCLM的mRNA表达 | 第70-71页 |
| 2.Western blot检测二相酶NQO1的蛋白表达 | 第71-72页 |
| 3.利用SDS-PAGE and western blot观察对Nrf2核转位和ERK1/2的磷酸化的影响 | 第72-73页 |
| 讨论 | 第73-75页 |
| 小结 | 第75-76页 |
| 总结 | 第76-77页 |
| 1.主要研究结论 | 第76页 |
| 2.主要创新点 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-86页 |
| Review | 第86-137页 |
| 文献综述 食用多酚及生物活性 | 第137-138页 |
| Manuscript No.1 | 第138-161页 |
| Manuscript No.2 | 第161-184页 |
| 致谢 | 第184-185页 |
| 博士学位期间发表或待发表文章及著作 | 第185-186页 |
| 博士学位期间获得或参加的课题 | 第186-187页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第187页 |
