中文摘要 | 第1-11页 |
英文摘要 | 第11-13页 |
1 引言 | 第13-39页 |
·植物启动子的核心结构及其功能 | 第13-15页 |
·转录起始位点 | 第13-14页 |
·TATA-box | 第14页 |
·CAAT-box | 第14-15页 |
·GC-box | 第15页 |
·组成型启动子 | 第15-17页 |
·Act1启动子 | 第15-16页 |
·CaMV35S 启动子 | 第16-17页 |
·Ubiquitin 启动子 | 第17页 |
·诱导型启动子 | 第17-27页 |
·盐诱导启动子 | 第18-19页 |
·重金属诱导启动子 | 第19-20页 |
·Ca~(2+)诱导型启动子 | 第20-21页 |
·氮诱导型启动子 | 第21页 |
·植物激素诱导启动子 | 第21-27页 |
·低温诱导启动子 | 第27页 |
·组织特异性启动子 | 第27-34页 |
·根特异启动子 | 第28-29页 |
·维管束特异表达启动子 | 第29-30页 |
·叶片表达启动子 | 第30-31页 |
·果实特异表达启动子 | 第31-32页 |
·种子特异表达启动子 | 第32-34页 |
·植物的耐盐机制与液泡型 Na~+/H~+逆向运转体 | 第34-37页 |
·植物的盐胁迫适应机制 | 第34-35页 |
·SOS 信号途径与植物耐盐 | 第35-36页 |
·液泡型 Na+/H+逆向运转体与 Na+的区隔化 | 第36-37页 |
·本研究的目的意义 | 第37-39页 |
2 材料与方法 | 第39-55页 |
·实验材料 | 第39-40页 |
·植物材料 | 第39页 |
·菌株与质粒 | 第39页 |
·酶与各种生化试剂 | 第39页 |
·实验用的引物 | 第39-40页 |
·实验方法 | 第40-55页 |
·植物基因组总 DNA 提取 | 第40-41页 |
·植物基因组 DNA 的纯化 | 第41页 |
·GhNHX1 启动子的分离-TAIL-PCR | 第41-43页 |
·DNA 片段与克隆载体的连接 | 第43-44页 |
·大肠杆菌 DH5α感受态的制备 | 第44页 |
·大肠杆菌细胞的转化 | 第44页 |
·电泳凝胶中 DNA 片段的回收 | 第44-45页 |
·克隆载体的酶切鉴定 | 第45页 |
·序列的测定 | 第45-46页 |
·质粒 DNA 的提取 | 第46-47页 |
·根癌农杆菌 LBA4404 感受态细胞的制备 | 第47页 |
·冻融法转化农杆菌 | 第47页 |
·农杆菌介导的烟草悬浮细胞的转化 | 第47-48页 |
·农杆菌介导的烟草的转化 | 第48页 |
·GUS 活性的组织化学分析 | 第48-49页 |
·GUS 基因表达的定量分析 | 第49-50页 |
·植物核蛋白的提取 | 第50-51页 |
·EMSA 探针的标记 | 第51-52页 |
·EMSA 探针的纯化 | 第52页 |
·制备聚丙烯酰胺凝胶 | 第52-53页 |
·DNA 探针与蛋白质的结合 | 第53页 |
·电泳、放射自显影 | 第53页 |
·启动子活性的瞬时表达分析 | 第53-55页 |
3 结果与分析 | 第55-70页 |
·GhNHX1 启动子的分离 | 第55-58页 |
·利用internet 工具进行 GhNHX1 启动子功能预测 | 第58-60页 |
·GhNHX1 启动子的 GUS 活性检测 | 第60-62页 |
·GhNHX1 启动子缺失分析 | 第62-65页 |
·GhNHX1 启动子-52/-25 区段活性分析 | 第65-66页 |
·Region I 和核蛋白的体外结合实验-EMSA | 第66-67页 |
·GhNHX1 启动子响应渗透胁迫、LiCl 和 ABA 的诱导 | 第67-68页 |
·GhNHX1 启动子的组织表达模式 | 第68-70页 |
4 讨论 | 第70-74页 |
·GhNHX1 启动子是一个受盐胁迫诱导的强启动子 | 第70页 |
·GhNHX1 启动子较长片断活性较低的问题 | 第70-71页 |
·响应盐胁迫信号的顺式作用元件位于GhNHX1启动子 的-52/-25区域 | 第71-72页 |
·TAIL-PCR 方法用与扩增启动子 | 第72页 |
·研究启动子的一般策略 | 第72-74页 |
5 结论 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-92页 |
附录 | 第92-96页 |
致谢 | 第96页 |