粗吻海龙抗肿瘤蛋白纯化及其体外活性研究
| 中文摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-15页 |
| ·粗吻海龙抗肿瘤活性研究进展 | 第12-13页 |
| ·抗肿瘤药物体外筛选方法 | 第13页 |
| ·蛋白质的分离纯化 | 第13-14页 |
| ·提取 | 第13-14页 |
| ·纯化 | 第14页 |
| ·立题依据及研究内容 | 第14-15页 |
| 第二章 粗吻海龙抗肿瘤活性蛋白的分离纯化 | 第15-39页 |
| ·实验材料与仪器 | 第15-16页 |
| ·实验材料 | 第15页 |
| ·细胞株 | 第15页 |
| ·主要试剂 | 第15-16页 |
| ·主要实验仪器 | 第16页 |
| ·实验方法 | 第16-22页 |
| ·离子交换层析 | 第16-17页 |
| ·离子交换介质的预处理和装柱 | 第16-17页 |
| ·样品在离子交换介质上的分离 | 第17页 |
| ·离子交换介质的再生 | 第17页 |
| ·凝胶过滤层析 | 第17页 |
| ·凝胶过滤介质的预处理和装柱 | 第17页 |
| ·样品在凝胶过滤介质上的分离 | 第17页 |
| ·抗肿瘤活性体外实验 | 第17-18页 |
| ·细胞培养 | 第18页 |
| ·操作步骤 | 第18页 |
| ·蛋白质浓度的测定 | 第18-19页 |
| ·考马斯亮蓝试剂的配制 | 第18-19页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第19页 |
| ·样品中蛋白质浓度的测定 | 第19页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第19-21页 |
| ·试剂配制 | 第20页 |
| ·操作步骤 | 第20-21页 |
| ·糖含量的测定 | 第21-22页 |
| ·溶液的配制 | 第21页 |
| ·葡萄糖标准曲线的绘制 | 第21-22页 |
| ·样品中糖浓度的测定 | 第22页 |
| ·IC_(50)计算 | 第22页 |
| ·实验结果 | 第22-37页 |
| ·粗吻海龙抗肿瘤活性粗蛋白的提取 | 第22-23页 |
| ·粗蛋白的提取 | 第22-23页 |
| ·粗蛋白的抗肿瘤活性检测 | 第23页 |
| ·LC的阴离子交换层析 | 第23-28页 |
| ·阴离子交换层析 | 第23-25页 |
| ·抗肿瘤活性检测 | 第25-28页 |
| ·D4的凝胶过滤层析 | 第28-32页 |
| ·凝胶过滤层析 | 第28-30页 |
| ·抗肿瘤活性检测 | 第30-32页 |
| ·S2的阴离子交换层析 | 第32-34页 |
| ·阴离子交换层析 | 第32-33页 |
| ·抗肿瘤活性检测 | 第33-34页 |
| ·粗吻海龙抗肿瘤蛋白的分离纯化工艺及部分性质 | 第34-37页 |
| ·粗吻海龙抗肿瘤蛋白的分离纯化工艺 | 第34-36页 |
| ·粗吻海龙抗肿瘤蛋白的部分性质 | 第36-37页 |
| ·小结 | 第37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 粗吻海龙抗肿瘤蛋白的活性机制初探 | 第39-49页 |
| ·实验材料与仪器 | 第39页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·细胞株 | 第39页 |
| ·试剂 | 第39页 |
| ·主要实验仪器 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-42页 |
| ·D2-1与化疗药物联合应用对肿瘤细胞生长的影响 | 第39-40页 |
| ·DNA琼脂糖凝胶电泳 | 第40-41页 |
| ·材料 | 第40页 |
| ·操作步骤 | 第40-41页 |
| ·流式细胞仪检测及分析 | 第41-42页 |
| ·材料 | 第41页 |
| ·操作步骤 | 第41-42页 |
| ·数据统计方法 | 第42页 |
| ·实验结果 | 第42-48页 |
| ·D2-1与化疗药物联合应用对肿瘤细胞生长的影响 | 第42-45页 |
| ·D2-1对肿瘤细胞DNA的影响 | 第45-46页 |
| ·D2-1对肿瘤细胞周期的影响 | 第46-48页 |
| ·小结 | 第48页 |
| ·讨论 | 第48-49页 |
| 本文结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 个人简历 | 第54-55页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第55页 |
