| 第一章 前言 | 第1-20页 |
| ·蛋白质组学概述 | 第10-11页 |
| ·蛋白质组学研究中的分离技术 | 第11-14页 |
| ·二维凝胶电泳(2D-PAGE) | 第11-12页 |
| ·液相色谱(LC) | 第12-14页 |
| ·生物质谱 | 第14-16页 |
| ·ESI-MS | 第15页 |
| ·MALDI-TOF MS | 第15-16页 |
| ·生物信息学 | 第16-17页 |
| ·数据库 | 第16页 |
| ·分析鉴定软件 | 第16-17页 |
| ·差异蛋白质组学研究 | 第17-18页 |
| ·胰腺癌研究进展 | 第18-19页 |
| ·本研究的内容及意义 | 第19-20页 |
| 第二章 SEC-RPLC-MS对人血清蛋白质组的研究 | 第20-37页 |
| ·引言 | 第20-21页 |
| ·实验部分 | 第21-24页 |
| ·试剂、材料和仪器 | 第21-22页 |
| ·试剂 | 第21-22页 |
| ·材料 | 第22页 |
| ·仪器 | 第22页 |
| ·样品处理 | 第22页 |
| ·稀释法 | 第22页 |
| ·脲溶液变性法 | 第22页 |
| ·疏水色谱饼处理样品 | 第22页 |
| ·蛋白含量测定 | 第22-23页 |
| ·基本原理 | 第23页 |
| ·实验步骤 | 第23页 |
| ·体积排阻色谱法(SEC) | 第23页 |
| ·反相色谱法(RPLC) | 第23-24页 |
| ·MALDI-TOF MS | 第24页 |
| ·结果与讨论 | 第24-36页 |
| ·样品处理的研究 | 第24-28页 |
| ·稀释法 | 第24页 |
| ·脲溶液变性法 | 第24-25页 |
| ·疏水色谱饼对血清的预处理 | 第25-27页 |
| ·三种血清预处理方式的比较 | 第27-28页 |
| ·SEC-RPLC对血清的分离 | 第28-30页 |
| ·MALDI-TOF MS分析 | 第30-36页 |
| ·小结 | 第36-37页 |
| 第三章 AFC-RPLC-MS对人血清糖蛋白质组的研究 | 第37-52页 |
| ·引言 | 第37-38页 |
| ·实验部分 | 第38-41页 |
| ·试剂与仪器 | 第38-39页 |
| ·试剂 | 第38页 |
| ·仪器 | 第38-39页 |
| ·亲合柱的制备 | 第39-40页 |
| ·醛基法 | 第39页 |
| ·羰基二咪唑法 | 第39-40页 |
| ·亲合色谱(AFC) | 第40页 |
| ·RPLC | 第40页 |
| ·MALDI-TOF MS | 第40页 |
| ·聚糖及糖肽的结构分析 | 第40-41页 |
| ·血清中糖蛋白及糖肽的分离分析 | 第41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-51页 |
| ·Con A亲合柱的制备和表征 | 第41-44页 |
| ·亲合色谱分离条件的优化 | 第44-45页 |
| ·酶解产物中聚糖与糖肽的分离纯化及结构鉴定 | 第45-49页 |
| ·血清中糖蛋白AFC-RPLC分离与质谱检测 | 第49-51页 |
| ·小结 | 第51-52页 |
| 第四章 胰腺组织的多维液相色谱——质谱研究 | 第52-60页 |
| ·引言 | 第52-53页 |
| ·实验部分 | 第53-54页 |
| ·材料和仪器 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-54页 |
| ·样品的处理 | 第53页 |
| ·离子交换色谱(IEC) | 第53-54页 |
| ·SEC-RPLC对胰腺组织IEC预分离组分的分离 | 第54页 |
| ·MALDI-TOF MS | 第54页 |
| ·结果与讨论 | 第54-59页 |
| ·IEC对组织样品的预分离 | 第54-56页 |
| ·SEC-RPLC对IEC预分离组分的再分离 | 第56-58页 |
| ·MALDI-TOF MS分析 | 第58-59页 |
| ·小结 | 第59-60页 |
| 第五章 胰腺癌标志物的筛选研究 | 第60-71页 |
| ·引言 | 第60页 |
| ·研究方法 | 第60-61页 |
| ·研究结果与讨论 | 第61-66页 |
| ·血清中胰腺癌标志物的筛选 | 第61-64页 |
| ·胰腺组织中肿瘤标志物的筛选 | 第64-66页 |
| ·小结 | 第66-71页 |
| 第六章 参考文献 | 第71-77页 |
| 第七章 发表论文与科研情况 | 第77-78页 |
| 第八章 致谢 | 第78页 |
