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沿海甜菜高频率诱导丛生芽体系的建立和转betA基因植株的再生

目录第1-6页
摘要第6-8页
ABSTRACT第8-11页
缩写说明第11-13页
1 前言第13-24页
 1.1 甜菜转化受体体系的建立第14-15页
 1.2 甜菜基因工程的研究进展第15-17页
 1.3 植物耐盐基因工程的研究进展第17-22页
  1.3.1 盐碱地开发利用的现状及意义第17-18页
  1.3.2 植物耐盐基因工程的策略第18-20页
  1.3.3 提高细胞甘氨酸甜菜碱含量的基因工程第20-22页
 1.4 抗除草剂基因工程和转基因植物安全性第22-23页
 1.5 本工作的目的和意义第23-24页
2 材料与方法第24-31页
 2.1 实验材料第24-26页
  2.1.1 植物材料第24页
  2.1.2 菌株与质粒第24-25页
  2.1.3 培养基第25页
   2.1.3.1 植物材料培养基第25页
  2.1.4 药品、试剂和溶液第25-26页
 2.2 方法第26-31页
  2.2.1 丛生芽体系的建立第26页
  2.2.2 农杆菌培养第26-27页
  2.2.3 丛生芽尖的遗传转化和共培养第27页
  2.2.4 转化小芽的抑菌筛选和定植第27页
  2.2.5 CTAB法微量提取沿海甜菜叶片DNA第27-28页
  2.2.6 转化植株的PCR检测第28页
  2.2.7 转 BetA植株的 PCR-Southem杂交检测第28-29页
  2.2.8 转化植株的耐盐性测定第29-31页
3 结果与分析第31-45页
 3.1 遗传转化受体体系的建立第31-36页
  3.1.1 丛生芽的诱导与继代培养第31-35页
  3.1.2 植株再生与移栽第35-36页
 3.2 芽尖遗传转化和转化植株的检测第36-44页
  3.2.1 芽尖遗传转化第36-37页
  3.2.2 负压处理对抗性芽尖率的影响第37-39页
  3.2.3 共培养时间对抗性芽尖率的影响第39页
  3.2.4 乙酰丁香酮对抗性芽尖率的影响第39页
  3.2.5 共培养温度对转化的影响第39-40页
  3.2.6 除草剂筛选浓度的确定和抗性植株的筛选第40页
  3.2.7 转化芽尖的耐盐筛选第40-43页
  3.2.8 转化植株的 PCR和 PCR-Southem杂交检测第43-44页
 3.3 转 BETA基因沿海甜菜 TO代植株的耐盐检测第44-45页
4 讨论第45-48页
 4.1 农杆菌介导的沿海甜菜丛生芽尖遗传转化体系的建立第45-47页
  4.1.1 沿海甜菜转基因受体系统的特点第45-46页
  4.1.2 提高转化频率的措施第46-47页
 4.2 转基因沿海甜菜的利用价值第47-48页
图版Ⅰ第48-49页
图版Ⅱ第49-50页
图版Ⅲ第50-51页
参考文献第51-60页
致谢第60-61页
攻读学位期间发表的学术论文第61页

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