| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-9页 |
| 符号说明 | 第9-11页 |
| 1 引言 | 第11-23页 |
| 1．1 活性氧的产生途径 | 第11-12页 |
| 1．1．1 自发的光氧化过程 | 第12页 |
| 1．1．2 Harber-Weiss反应 | 第12页 |
| 1．1．3 Ferlton反应 | 第12页 |
| 1．1．4 脂质过氧化作用 | 第12页 |
| 1．1．5 逆境胁迫 | 第12页 |
| 1．2 叶绿体内活性氧的产生的途径 | 第12-13页 |
| 1．2．1 类囊体途径 | 第13页 |
| 1．2．2 叶绿体基质途径 | 第13页 |
| 1．2．3 黄素脱氢酶途径 | 第13页 |
| 1．3 活性氧的作用及其氧化损伤 | 第13-14页 |
| 1．3．1 活性氧对植物的氧化损伤 | 第13-14页 |
| 1．3．2 活性氧的积极作用 | 第14页 |
| 1．4 清除活性氧的酶促系统 | 第14-20页 |
| 1．4．1 超氧化物歧化酶（SOD) | 第14-15页 |
| 1．4．2 抗坏血酸过氧化物酶（APX) | 第15-19页 |
| 1．4．3 过氧化氢酶（CAT) | 第19-20页 |
| 1．4．4 谷胱甘肽还原酶（GR) | 第20页 |
| 1．5 有关抗氧化酶系统的基因工程 | 第20-22页 |
| 1．6 本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-39页 |
| 2．1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2．1．1 植物材料 | 第23页 |
| 2．1．2 材料处理 | 第23页 |
| 2．1．3 菌株与质粒 | 第23页 |
| 2．1．4 酶及生化试剂 | 第23页 |
| 2．1．5 PCR引物 | 第23-24页 |
| 2．2 试验方法 | 第24-39页 |
| 2．2．1 生理指标测定 | 第24-25页 |
| 2．2．1．1 活性氧清除酶活性的测定 | 第24-25页 |
| 2．2．2 分子生物学方法 | 第25-39页 |
| 2．2．2．1 总RNA的提取 | 第25-26页 |
| 2．2．2．2 反转录 | 第26-27页 |
| 2．2．2．3 番茄类囊体APX基因片段的克隆 | 第27-30页 |
| 2．2．2．4 连接反应 | 第30-31页 |
| 2．2．2．5 感受态细胞的制备 | 第31页 |
| 2．2．2．6 转化 | 第31-32页 |
| 2．2．2．7 碱法小量提取质粒DNA | 第32-33页 |
| 2．2．2．8 酶切鉴定 | 第33页 |
| 2．2．2．9 序列测定 | 第33页 |
| 2．2．2．10 正义APX基因表达载体的构建 | 第33-34页 |
| 2．2．2．11 根癌农杆菌LBA4404感受态细胞的制备、转化 | 第34页 |
| 2．2．2．12 农杆菌介导转化烟草 | 第34-35页 |
| 2．2．2．13 转基因烟草的分子鉴定 | 第35-37页 |
| 2．2．2．14 番茄叶绿体Cu／Zrl一SOD基因的分离 | 第37-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-52页 |
| 3．1 低温对番茄叶片活性氧清除酶活性影响 | 第39-40页 |
| 3．2 类囊体结合型APX基因片段的克隆 | 第40-50页 |
| 3．2．1 中间片段的克隆 | 第40-41页 |
| 3．2．2 APX基因5’端片段的分离 | 第41-42页 |
| 3．2．3 APX基因3’端的克隆 | 第42-43页 |
| 3．3．4 APX基因全长的克隆 | 第43-48页 |
| 3．2．5 正义APX基因表达载体的构建 | 第48-49页 |
| 3．2．6 转基因植株的APX酶活性的测定 | 第49-50页 |
| 3．3 叶绿体Cu／Z11一SOD基因全长的克隆和序列分析 | 第50-52页 |
| 3．3．1 叶绿体Cu／Zn-SOD基因全长的克隆 | 第50-51页 |
| 3．3．2 序列分析 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-55页 |
| 4．1 低温胁迫对番茄叶片活性氧代谢的影响 | 第52页 |
| 4．2 类囊体膜tAPX与基质sAPX的氨基酸序列分析 | 第52-53页 |
| 4．3 有关SOD基因功能 | 第53-54页 |
| 4．4 展望 | 第54-55页 |
| 4．5 进一步研究的设想 | 第55页 |
| 5． 结论 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-67页 |
| 附录 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第69页 |
