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PNZIP基因启动子的克隆与功能分析

英文缩略表第1-8页
中文摘要第8-9页
1 引言第9-17页
 1.1 高等植物组织特异启动子研究进展第9-16页
  1.1.1 叶片特异表达启动子第9-11页
   1.1.1.1 光诱导型叶片特异表达启动子第9-11页
   1.1.1.2 非光诱导型叶片特异表达启动子第11页
  1.1.2 种子特异表达启动子第11-13页
  1.1.3 维管束特异表达启动子第13-14页
  1.1.4 果实特异表达启动子第14-15页
   1.1.4.1 双子叶植物果实特异表达启动子第14-15页
   1.1.4.2 单子叶植物植物果实特异表达启动子第15页
  1.1.5 块茎专一表达启动子第15页
  1.1.6 花特异表达启动子第15-16页
   1.1.6.1 花药特异表达启动子第16页
   1.1.6.2 花粉特异表达启动子第16页
 1.2 本课题的目的意义第16-17页
2 材料与方法第17-33页
 2.1 材料第17-18页
  2.1.1 植物材料第17页
  2.1.2 菌株与质粒第17页
  2.1.3 酶与生化试剂第17页
  2.1.4 PCR引物第17-18页
 2.2 实验方法第18-33页
  2.2.1 基因组DNA的提取第18-19页
   2.2.1.1 CTAB法提取裂叶牵牛基因组总DNA第18页
   2.2.1.2 总DNA提取产物的纯化第18页
   2.2.1.3 微量法提取烟草总DNA第18-19页
  2.2.2 PNZIP基因启动子的分离第19-23页
   2.2.2.1 PNZIP基因启动子的PCR扩增第19-20页
   2.2.2.2 目的片段的克隆第20页
   2.2.2.3 感受态细胞制备第20-21页
   2.2.2.4 转化第21页
   2.2.2.5 碱法小量提取质粒DNA第21-22页
   2.2.2.6 大量提取质粒DNA第22-23页
   2.2.2.7 克隆载体质粒DNA的酶切鉴定第23页
   2.2.2.8 序列测定第23页
  2.2.3 总RNA的提取第23-25页
  2.2.4 转录启始位点的鉴定第25页
  2.2.5 亚克隆的测序第25-26页
  2.2.6 PNZIP基因启动子缺失片段的获得第26-27页
  2.2.7 植物表达载体的构建第27-28页
  2.2.8 根癌农杆菌LBA4404感受态细胞的制备、转化第28页
   2.2.8.1 农杆菌感受态细胞的制备第28页
   2.2.8.2 冻融法转化农杆菌第28页
  2.2.9 农杆菌介导转化烟草第28-30页
   2.2.9.1 农杆菌的培养第28-29页
   2.2.9.2 烟草的转化第29-30页
  2.2.10 转基因烟草PCR检测第30页
  2.2.11 转基因烟草的GUS活性分析第30-33页
   2.2.11.1 GUS基因表达的组织化学检测第30页
   2.2.11.2 GUS基因表达的定量分析第30-31页
   2.2.11.3 荧光测定第31-32页
   2.2.11.4 酶活力计算第32-33页
3 结果与分析第33-47页
 3.1 PNZIP基因启动子的分离第33-37页
  3.1.1 PNZIP基因启动子的克隆及鉴定第33-35页
  3.1.2 PNZIP全长启动子序列第35-37页
 3.2 PNZIP启动子转录起始位点的分析第37页
 3.3 PNZIP启动子缺失片段的获得第37-38页
 3.4 植物表达载体的构建第38-41页
 3.5 根癌农杆菌的转化第41页
 3.6 转基因烟草的获得及检测第41-43页
 3.7 转基因烟草GUS基因表达的组织化学检测第43页
 3.8 GUS基因表达的定量分析第43-47页
4 讨论第47-53页
 4.1 启动子的克隆方法第47-48页
  4.1.1 利用探针杂交法第47页
  4.1.2 利用PCR方法克隆启动子第47-48页
   4.1.2.1 反向PCR(inverse PCR)克隆启动子第47页
   4.1.2.2 接头PCR(adaptor PCR)克隆启动子第47-48页
    4.1.2.2.1 接头PCR克隆启动子的注意事项第47-48页
 4.2 PNZIP启动子的功能分析第48-53页
  4.2.1 PNZIP启动子的特征第48-50页
  4.2.2 PNZIP启动子可能的调控方式第50-53页
5 结论第53-54页
英文摘要第54-55页
参考文献第55-61页
致谢第61页

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