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大肠杆菌细胞表面展示体系的建立及其应用

中文摘要第1-7页
英文摘要第7-9页
1. 微生物细胞表面展示研究进展第9-22页
 1.1 微生物细胞表面展示的概念及发展第9-10页
 1.2 微生物细胞表面展示的应用第10-13页
  1.2.1 构建和筛选蛋白质文库第10-11页
  1.2.2 开发活菌体疫苗,生产抗血清和多克隆抗体第11-12页
  1.2.3 构建全细胞催化剂第12页
  1.2.4 开发新型微生物吸附剂第12页
  1.2.5 研制新型生物传感器第12-13页
 1.3 展示体系的多样性第13-18页
  1.3.1 在酵母菌中表达的展示载体第13页
  1.3.2 在革兰氏阳性菌中表达的展示载体第13-14页
  1.3.3 在革兰氏阴性菌中表达的展示载体第14-18页
   1.3.3.1 “三夹板”融合式(sandwich fusion)第15-17页
   1.3.3.2 C端融合式第17-18页
   1.3.3.3 N端融合式第18页
 1.4 构建展示载体的一般原则第18-20页
  1.4.1 运载蛋白与乘客蛋白的匹配第18-19页
  1.4.2 宿主适宜第19-20页
 1.5 二肽蛋白及多肽蛋白的展示第20-22页
2. 研究目的第22-24页
3. 材料和方法第24-30页
 3.1 实验材料第24-26页
  3.1.1 菌株第24页
  3.1.2 质粒第24页
  3.1.3 聚合酶链式反应的引物第24页
  3.1.4 培养基第24-26页
  3.1.5 试剂及仪器第26页
 3.2 实验方法第26-30页
  3.2.1 菌体的培养及诱导第26-27页
  3.2.2 大肠杆菌染色体的提取第27页
  3.2.3 大肠杆菌质粒的提取第27页
  3.2.4 大肠杆菌受体菌的转化第27页
  3.2.5 DNA的电泳分析第27页
  3.2.6 DNA片断的回收第27页
  3.2.7 PCR反应第27页
  3.2.8 蛋白样品的制备及分析第27-28页
  3.2.9 重组菌株对SDS和EDTA的敏感性第28页
  3.2.10 Ni-NTA-琼脂糖微球吸附实验第28-29页
  3.2.11 镉离子吸附实验第29页
  3.2.12 刚果红染色法测定木聚糖酶的活力第29页
  3.2.13 DNS试剂法测定木聚糖酶的活力第29-30页
4. 结果与分析第30-60页
 4.1 克隆大肠杆菌的OMPC基因第30-37页
  4.1.1 从大肠杆菌菌株中克隆ompC及其启动子第30-31页
  4.1.2 将ompC基因及其启动子克隆至pUC19,构建pSXU19第31-32页
  4.1.3 将ompC基因及其启动子克隆至pACYC184,构建pSXU184第32-33页
  4.1.4 基因ompC在pSXU19和pSXU184上的表达第33-34页
  4.1.5 将ompC基因克隆至pTrc99A,构建pTrcC第34-37页
  4.1.6 大肠杆菌OmpC蛋白的结构分析第37页
 4.2 在大肠杆菌细胞表面展示多聚组氨酸肽(POLYHIS)第37-51页
  4.2.1 质粒pTCdP的构建第37-39页
  4.2.2 构建ompC-(6His)_1融合基因第39-41页
  4.2.3 构建ompC-(6His)n融合基因第41页
  4.2.4 ompC-(6His)n融合基因在系列质粒载体pTCHP上的表达第41-47页
  4.2.5 Ni-NTA-琼脂糖微球吸附实验第47-48页
  4.2.6 重组菌株MC4100(pTCHP)对镉离子的吸附实验第48-49页
  4.2.7 重组菌株MC4100(pTCHP)的生理特性第49-51页
 4.3 OMPC-(6HIS)N融合蛋白在pKCH6和pKCH12质粒上的表达第51-53页
  4.3.1 质粒pKCH6和pKCH12的构建第51页
  4.3.2 OmpC-(6His)_6和OmpC-(6His)_(12)在MC4100(pKCH6)和MC4100(pKCH12)中的表达第51-53页
 4.4 OMPC-XYLANASE融合蛋白的构建与表达第53-60页
  4.4.1 ompC-xylanase(ompC-xyl)融合基因的构建第53-54页
  4.4.2 OmpC-xylanase融合蛋白的表达第54-60页
5. 讨论第60-64页
 5.1 重组大肠杆菌菌株的外膜的稳定性第60-61页
 5.2 β-内酰胺酶的大量表达对其它分泌型蛋白的影响第61-62页
 5.3 微生物细胞表面展示技术与重金属离子的生物吸附第62-64页
6. 结论第64-65页
参考文献第65-73页
缩略语表第73-74页
致谢第74-75页
附录第75-84页

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