| 英文缩略词表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-12页 |
| 英文摘要 | 第12-18页 |
| 前言 | 第18-21页 |
| 材料与方法 | 第21-32页 |
| 1.实验动物与血压测量 | 第21-22页 |
| 2.主要实验仪器及软件 | 第22-23页 |
| 3.溶液及药品 | 第23-24页 |
| 4.单个血管平滑肌细胞的分离 | 第24-25页 |
| 5.离子通道的电流记录 | 第25-32页 |
| ·膜片箝技术简介 | 第25-29页 |
| ·具体实验步骤 | 第29-32页 |
| 实验结果 | 第32-62页 |
| 1.外源性NO与cGMP激活Wistar大鼠肠系膜动脉阻力血管平滑肌细胞K_(Ca) | 第32-37页 |
| ·肠系膜动脉阻力血管平滑肌K_(Ca)特征 | 第32页 |
| ·外源性NO与cGMP激活肠系膜动脉阻力血管平滑肌全细胞K~+电流 | 第32-35页 |
| ·细胞贴附式下,外源性NO与cGMP激活肠系膜动脉阻力血管平滑肌K_(Ca) | 第35-37页 |
| 2.外源性NO激活Wistar大鼠肠系膜动脉阻力血管平滑肌K_(Ca)与钙离子浓度关系 | 第37-41页 |
| 3.美蓝未能阻断外源性NO对Wistar大鼠肠系膜动脉阻力血管平滑肌K_(Ca)的激活效应 | 第41-42页 |
| 4.Microcystine-LR可激活Wistar大鼠肠系膜动脉阻力血管平滑肌细胞K_(Ca) | 第42-43页 |
| ·Microcystine-LR对Wistar大鼠肠系膜动脉阻力血管平滑肌全细胞K~+电流的激活效应 | 第42-43页 |
| ·Microcystine-LR对Wistar大鼠肠系膜动脉阻力血管平滑肌细胞K_(Ca)单通道的激活效应 | 第43页 |
| 5 Microcystine-LR与NO激活肠系膜动脉阻力血管平滑肌细胞K_(Ca)效应有协同作用 | 第43-46页 |
| 6 外源性NO激活SHR_(SP)肠系膜动脉阻力血管平滑肌K_(Ca) | 第46-52页 |
| ·SHR_(SP)肠系膜动脉阻力血管平滑肌K_(Ca)特点 | 第46-50页 |
| ·静息状态下,SHR_(SP)与WKY的K_(CP)开放概率比较 | 第50-51页 |
| ·静息状态下,NO激活SHR_(SP)与WKY的K_(Ca)效应的比较 | 第51-52页 |
| 7 外源性NO激活SHR_(SP)肠系膜动脉阻力血管平滑肌K_(Ca)效应与钙离子浓度的关系 | 第52-54页 |
| 8.美蓝未能阻断外源性NO激活SHR_(SP)肠系膜动脉阻力血管平滑肌K_(Ca)的效应 | 第54-55页 |
| 9.Microcystine-LR增强外源性NO对SHR_(SP)肠系膜动脉阻力血管平滑肌细胞K_(Ca)的激活效应 | 第55-57页 |
| 10.Wistar大鼠脑动脉半滑肌细胞K_(Ca)特点以及外源性NO与cGMP的激活效应 | 第57-62页 |
| ·大鼠脑动脉平滑肌细胞K_(Ca)特点 | 第57-60页 |
| ·外源性NO对脑动脉平滑肌K_(Ca)激活效应 | 第60页 |
| ·外源性cGMP对脑动脉平滑肌K_(Ca)激活效应 | 第60-62页 |
| 讨论 | 第62-68页 |
| 1.NO激活SHR_(SP)和正常大鼠阻力血管平滑肌K_(Ca)途径的初步分析 | 第62-64页 |
| ·NO激活SHR_(SP)和正常大鼠阻力血管平滑肌K_(Ca)效应的确认 | 第62页 |
| ·NO激活阻力血管平滑肌K_(Ca)可能存在着cGMP-PKG非依赖途径 | 第62-63页 |
| ·NO激活阻力血管平滑肌K_(Ca)可能不是通过抑制脱磷酸化过程 | 第63-64页 |
| 2.静息状态下,SHR_(SP阻力血管平滑肌膜K_(Ca)开放概率增加与对NO的反应性降低 | 第64-67页 |
| 3.NO激活脑动脉平滑肌K_(Ca)的意义 | 第67-68页 |
| 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 文献综述一 NO对离子通道的调控 | 第76-87页 |
| 文献综述二 NO与高血压 | 第87-122页 |
| 攻读博士期间发表的文章和参加的会议 | 第122-123页 |
| 个人简历 | 第123-124页 |
| 致谢 | 第124页 |
