| 提要 | 第1-7页 |
| 英文缩写 | 第7-8页 |
| 前言 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-32页 |
| 1. 糖尿病的一般情况 | 第9-10页 |
| 2. 糖尿病合并皮肤溃疡的背景文献 | 第10-14页 |
| 3. 低剂量辐射在糖尿病并发症中的治疗作用 | 第14-22页 |
| 4. 血管内皮祖细胞在血管新生中的作用 | 第22-32页 |
| 第二章 材料与方法 | 第32-46页 |
| 1. 主要试剂和器材 | 第32-35页 |
| 2. 仪器 | 第35-36页 |
| 3. 实验动物 | 第36页 |
| 4. 照射条件 | 第36页 |
| 5. 糖尿病模型建立及分组处理 | 第36-38页 |
| 6. 检测指标 | 第38-40页 |
| 7. 流式细胞计数检测外周血中及骨髓中CD31 百分率的变化 | 第40-41页 |
| 8. 明胶酶谱分析MMP-2 及MMP-9 表达 | 第41-43页 |
| 9. 实时定量PCR 检测MMP-2、MMP-9、TIMP-1 在转录水平的变化 | 第43-45页 |
| 10. 统计学方法 | 第45-46页 |
| 第三章 实验结果 | 第46-61页 |
| 1. 各组大鼠在实验前后的体重变化 | 第46-47页 |
| 2. 各组大鼠血糖在实验过程中的变化 | 第47-48页 |
| 3. 各组大鼠间干预治疗前后愈合能力的比较 | 第48-50页 |
| 4. 形态学检查 | 第50-53页 |
| 5. 流式细胞计数显示CD31 阳性细胞在外周血及骨髓中的百分率 | 第53-55页 |
| 6. 明胶酶谱检测MMP-2、MMP-9 活性变化 | 第55-58页 |
| 7. 实时定量PCR 技术检测在糖尿病皮肤缺损愈合过程中MMP-2、MMP-9 及TIMP-1 基因转录水平的变化 | 第58-61页 |
| 第四章 讨论 | 第61-75页 |
| 一、糖尿病皮肤创伤模型的建立 | 第61-62页 |
| 二、糖尿病皮肤创伤的影响机制 | 第62-63页 |
| 三、LDR 促进糖尿病皮肤创伤愈合的影响机制 | 第63-69页 |
| 四、bFGF 对于糖尿病皮肤创伤愈合的影响机制 | 第69-71页 |
| 五、锌对于糖尿病皮肤创伤愈合的影响机制 | 第71-74页 |
| 六、多种干预因素联合应用促进糖尿病皮肤创伤愈合的机制探讨 | 第74-75页 |
| 结论 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-95页 |
| 附图 | 第95-118页 |
| 攻读博士期间发表的学术论文及获得的课题 | 第118-119页 |
| 中文摘要 | 第119-124页 |
| 英文摘要 | 第124-131页 |
| 致谢 | 第131页 |
