| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 1 前言 | 第10-28页 |
| ·超分子概述 | 第10页 |
| ·环糊精的结构和性质 | 第10-14页 |
| ·环糊精基本结构特征 | 第10-11页 |
| ·环糊精的物理性质 | 第11页 |
| ·环糊精的化学性质 | 第11-12页 |
| ·环糊精的生物学性质 | 第12-13页 |
| ·羟丙基-β-环糊精的特性 | 第13-14页 |
| ·环糊精的包结作用 | 第14-17页 |
| ·环糊精的包结作用结合机理及步骤 | 第14-15页 |
| ·环糊精的包结物制备方法 | 第15-16页 |
| ·包结作用的意义 | 第16-17页 |
| ·甾体化合物的结构和功能 | 第17-18页 |
| ·甾体化合物的结构 | 第17页 |
| ·甾体化合物的种类、功能及发展状况 | 第17-18页 |
| ·甾体化合物的微生物转化 | 第18-21页 |
| ·甾体化合物的生物转化类型 | 第18-19页 |
| ·甾体化合物微生物转化反应的特点 | 第19-20页 |
| ·微生物转化甾体化合物的影响因素 | 第20-21页 |
| ·环糊精在甾体生物转化中的研究进展 | 第21-23页 |
| ·微生物甾体侧链降解 | 第23-24页 |
| ·甾体激素生产原料的发展 | 第23-24页 |
| ·微生物选择性降解甾体边链的机理 | 第24页 |
| ·本课题的主要研究内容及意义 | 第24-28页 |
| ·微生物法制备雄甾烯酮的作用和意义 | 第24-27页 |
| ·本论文的主要研究内容 | 第27-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-36页 |
| ·实验材料 | 第28-30页 |
| ·实验菌种 | 第28页 |
| ·主要实验试剂 | 第28-29页 |
| ·主要实验仪器 | 第29页 |
| ·培养基 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-36页 |
| ·添加HP-β-CD对PS和AD增溶效果比较 | 第30页 |
| ·植物甾醇的侧链降解菌的菌种筛选 | 第30页 |
| ·植物甾醇的侧链降解反应 | 第30-31页 |
| ·植物甾醇转化产物的分析 | 第31-34页 |
| ·生物量测定方法 | 第34页 |
| ·HP-β-CD对分枝杆菌生长特性的影响 | 第34页 |
| ·添加HP-β-CD后植物甾醇侧链降解产物的结构鉴定 | 第34-36页 |
| 3 结果与讨论 | 第36-66页 |
| ·优良菌株的筛选 | 第36-38页 |
| ·保藏菌株的植物甾醇侧链降解性能分析 | 第36-37页 |
| ·菌株的分离与纯化 | 第37-38页 |
| ·植物甾醇的侧链降解反应 | 第38-44页 |
| ·反应介质对植物甾醇的侧链降解反应的影响 | 第38-41页 |
| ·环糊精添加方式对植物甾醇生物降解反应的影响 | 第41-42页 |
| ·环糊精添加量对植物甾醇生物转化的影响 | 第42-44页 |
| ·HP-β-CD的添加对分枝杆菌生长特性的影响 | 第44-45页 |
| ·加入HP-β-CD后转化产物的结构分析 | 第45-49页 |
| ·高压液相色谱分析 | 第45-46页 |
| ·红外光谱分析 | 第46-47页 |
| ·核磁共振光谱分析 | 第47-49页 |
| ·含有环糊精体系的PS生物转化反应 | 第49-57页 |
| ·含有HP-β-CD体系的植物甾醇侧链降解反应 | 第49-52页 |
| ·不同转化菌株对植物甾醇转化反应的影响 | 第52-57页 |
| ·含有HP-β-CD体系的植物甾醇侧链降解反应的工艺条件优化 | 第57-59页 |
| ·pH值对植物甾醇生物转化的影响 | 第57-58页 |
| ·接种量对植物甾醇生物转化的影响 | 第58-59页 |
| ·溶氧对植物甾醇转化的影响 | 第59页 |
| ·7 L发酵罐转化实验 | 第59-62页 |
| ·操作参数的控制 | 第59-60页 |
| ·分枝杆菌在7L发酵罐内的生物转化过程 | 第60-61页 |
| ·转化产物的生成曲线 | 第61-62页 |
| ·HP-β-CD提高植物甾醇生物转化的机理研究 | 第62-66页 |
| ·HP-β-CD的增溶作用 | 第62-64页 |
| ·HP-β-CD的加入降低了底物/产物抑制 | 第64-66页 |
| 4 结论 | 第66-67页 |
| 5 展望 | 第67-68页 |
| 6 参考文献 | 第68-74页 |
| 7 攻读学位期间发表的论文 | 第74-75页 |
| 8 致谢 | 第75页 |