| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-20页 |
| ·禽类眼的组织结构特征 | 第10页 |
| ·视网膜 | 第10-16页 |
| ·视网膜的发育研究 | 第12页 |
| ·视网膜神经元 | 第12-14页 |
| ·脊椎动物视网膜神经细胞的发生顺序 | 第13-14页 |
| ·视网膜神经节细胞的相关研究 | 第14页 |
| ·视网膜胶质细胞 | 第14-16页 |
| ·Müller 细胞的相关研究 | 第14-16页 |
| ·Notch 基因的研究研究现状 | 第16-20页 |
| ·Notch 基因的发现与分类 | 第16页 |
| ·Notch 的结构 | 第16页 |
| ·Notch 的配体 | 第16-17页 |
| ·Notch-Delta 信号通路机制 | 第17-18页 |
| ·Notch 的功能 | 第18-20页 |
| 2 引言 | 第20-21页 |
| 3 材料与方法 | 第21-32页 |
| ·实验材料 | 第21-25页 |
| ·实验动物 | 第21页 |
| ·实验仪器 | 第21-22页 |
| ·组织学实验使用仪器 | 第21页 |
| ·分子生物学实验用仪器 | 第21-22页 |
| ·实验用试剂 | 第22页 |
| ·组织学实验用试剂 | 第22页 |
| ·分子生物学实验用试剂 | 第22页 |
| ·溶液的配置方法 | 第22-25页 |
| ·组织学实验用溶液的配置方法 | 第22-23页 |
| ·分子生物学实验用溶液的配置 | 第23-25页 |
| ·实验用抗体 | 第25页 |
| ·载体和宿主菌 | 第25页 |
| ·试验方法 | 第25-32页 |
| ·组织学实验方法 | 第25-26页 |
| ·视网膜组织切片的制备 | 第25-26页 |
| ·HE.染色步骤 | 第26页 |
| ·免疫组织化学染色步骤 | 第26页 |
| ·分子克隆方法 | 第26-31页 |
| ·引物的设计与合成 | 第26页 |
| ·视网膜总RNA 的提取 | 第26-27页 |
| ·RT-PCR 扩增 | 第27-28页 |
| ·PCR 产物纯化与检测 | 第28-29页 |
| ·连接与转化 | 第29-30页 |
| ·重组体的鉴定 | 第30页 |
| ·DNA 测序、分析 | 第30-31页 |
| ·半定量RT-PCR | 第31-32页 |
| ·内参基因的确定 | 第31页 |
| ·总RNA 的提取 | 第31页 |
| ·总RNA 反转录 | 第31页 |
| ·PCR 循环数的确定 | 第31页 |
| ·半定量PCR 扩增 | 第31页 |
| ·电泳及灰度分析 | 第31-32页 |
| 4 结果与分析 | 第32-50页 |
| ·组织学实验结果与分析 | 第32-43页 |
| ·HE 染色结果及分析 | 第32-41页 |
| ·视网膜细胞层厚度变化规律 | 第34-38页 |
| ·视网膜三核层变化规律 | 第38-41页 |
| ·免疫组织化学结果与分析 | 第41-43页 |
| ·NSE 在胚期固始鸡视网膜中的表达情况 | 第41页 |
| ·Vimentin 在胚期固始鸡视网膜中的表达情况 | 第41-43页 |
| ·固始鸡视Notch1 和GAPDH 基因片段的克隆与鉴定 | 第43-46页 |
| ·总RNA 的提取 | 第43页 |
| ·固始鸡Notch1 和GAPDH 基因片段的RT-PCR 扩增 | 第43-45页 |
| ·重组质粒测定与分析 | 第45-46页 |
| ·Notch1 基因在胚期固始鸡视网膜和脑发育中表达的半定量结果与分析 | 第46-50页 |
| ·循环数的确定 | 第46-47页 |
| ·半定量结果与分析 | 第47-50页 |
| ·眼部半定量结果分析 | 第47-48页 |
| ·脑部半定量结果与分析 | 第48-50页 |
| 5 结论与讨论 | 第50-52页 |
| ·固始鸡胚期视网膜结构特点 | 第50页 |
| ·NSE 在胚期固始鸡视网膜中的表达情况 | 第50-51页 |
| ·Vimentin 在胚期固始鸡视网膜中的表达情况 | 第51页 |
| ·Notch1 基因在胚期固始鸡视网膜和脑发育中的表达 | 第51-52页 |
| 展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 英文摘要 | 第58-59页 |
