| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-24页 |
| 1.1 SO_2和NO_x的来源及危害 | 第11页 |
| 1.1.1 SO_2的来源及危害 | 第11页 |
| 1.1.2 NO_x的来源及危害 | 第11页 |
| 1.2 生物法脱除SO_2的研究进展 | 第11-15页 |
| 1.2.1 好氧生物法脱除SO_2的机理 | 第11-13页 |
| 1.2.2 厌氧生物法脱除SO_2的机理 | 第13-15页 |
| 1.3 生物法脱除NO_x的研究进展 | 第15-20页 |
| 1.3.1 自养硝化作用 | 第15页 |
| 1.3.2 异养硝化作用 | 第15-16页 |
| 1.3.3 厌氧反硝化作用 | 第16-18页 |
| 1.3.4 好氧反硝化作用 | 第18-20页 |
| 1.4 生物法同时脱硫脱氮的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.4.1 同种细菌同时脱硫脱氮 | 第21-22页 |
| 1.4.2 多种细菌协同同时脱硫脱氮 | 第22页 |
| 1.5 研究的目的和内容 | 第22-24页 |
| 1.5.1 立题的依据和目的 | 第22-23页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第24-33页 |
| 2.1 生物塔同时脱硫脱氮实验装置 | 第24-25页 |
| 2.1.1 装置介绍 | 第24页 |
| 2.1.2 设备运行原理 | 第24-25页 |
| 2.2 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.2.1 实验菌种 | 第25页 |
| 2.2.2 培养基 | 第25-26页 |
| 2.2.3 主要实验仪器及设备 | 第26-27页 |
| 2.2.4 主要试剂及其配置方法 | 第27页 |
| 2.3 分析方法 | 第27-28页 |
| 2.3.1 麝香草酚分光光度法 | 第27-28页 |
| 2.3.2 铬酸钡分光光度法 | 第28页 |
| 2.4 实验方法 | 第28-33页 |
| 2.4.1 菌种的采集和富集培养 | 第28-29页 |
| 2.4.2 细菌的分离和纯化 | 第29页 |
| 2.4.3 菌种的保存和复苏 | 第29页 |
| 2.4.4 高效同时脱硫脱氮细菌的筛选 | 第29-30页 |
| 2.4.5 细菌形态学研究 | 第30页 |
| 2.4.6 分子生物学鉴定 | 第30-31页 |
| 2.4.7 最佳生长条件优化实验 | 第31-32页 |
| 2.4.8 分离细菌对填料塔脱氮效率的影响研究 | 第32-33页 |
| 第三章 菌株5XSB的分离鉴定及同时脱硫脱氮性能研究 | 第33-42页 |
| 3.1 高效同时脱硫脱氮细菌的筛选 | 第33页 |
| 3.2 菌株5XSB的形态学研究 | 第33-34页 |
| 3.3 菌株5XSB的分子生物学鉴定 | 第34-35页 |
| 3.4 盐单胞菌(菌株5XSB)最佳生长条件优化实验 | 第35-38页 |
| 3.4.1 细菌最佳生长pH优化实验 | 第36页 |
| 3.4.2 细菌最佳生长温度优化实验 | 第36-37页 |
| 3.4.3 细菌最佳生长碳源优化实验 | 第37-38页 |
| 3.5 盐单胞菌(菌株5XSB)对同时脱硫脱氮系统脱氮效率的影响 | 第38-42页 |
| 3.5.1 细菌对同时脱硫脱氮系统脱氮效率的影响 | 第38-40页 |
| 3.5.2 细菌对脱硫塔脱氮效率的影响 | 第40-42页 |
| 第四章 菌株9XSB的分离鉴定及同时脱硫脱氮性能研究 | 第42-49页 |
| 4.1 菌株9XSB的形态学研究 | 第42-43页 |
| 4.2 9号菌株分子生物学鉴定 | 第43页 |
| 4.3 荧光假单胞菌(菌株9XSB)最佳生长条件优化实验 | 第43-45页 |
| 4.3.1 细菌最佳生长pH优化实验 | 第43-44页 |
| 4.3.2 细菌最佳生长温度优化实验 | 第44页 |
| 4.3.3 细菌最佳生长碳源优化实验 | 第44-45页 |
| 4.4 荧光假单胞菌(菌株9XSB)对同时脱硫脱氮系统脱氮效率的影响 | 第45-49页 |
| 4.4.1 细菌对同时脱硫脱氮系统脱氮效率的影响 | 第45-46页 |
| 4.4.2 细菌对脱硫塔脱氮效率的影响 | 第46-49页 |
| 第五章 结论 | 第49-50页 |
| 附录1 两株细菌16s rRNA基因序列 | 第50-52页 |
| 附录2 攻读硕士学位期间论文发表情况 | 第52页 |
| 附录3 攻读硕士期间参与的科研项目 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
