| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略语表 | 第7-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-23页 |
| 1.1 骨骼肌 | 第14-19页 |
| 1.1.1 骨骼肌结构 | 第14-15页 |
| 1.1.2 骨骼肌功能 | 第15-16页 |
| 1.1.3 骨骼肌在疾病和运动中的应用 | 第16-18页 |
| 1.1.4 骨骼肌卫星细胞 | 第18-19页 |
| 1.2 丙谷二肽在肌肉中的应用 | 第19-20页 |
| 1.3 代谢组学 | 第20-22页 |
| 1.3.1 细胞代谢组学 | 第21页 |
| 1.3.2 细胞代谢组学的应用 | 第21-22页 |
| 1.4 本论文研究内容 | 第22-23页 |
| 第二章 基于NMR代谢组学研究丙谷二肽补充对能量剥夺诱导损伤的C2C12细胞的影响 | 第23-61页 |
| 2.1 引言 | 第23-24页 |
| 2.2 材料与方法 | 第24-32页 |
| 2.2.1 药品试剂和耗材 | 第24-25页 |
| 2.2.2 仪器和软件 | 第25-26页 |
| 2.2.3 Ala-Gln结构和纯度表征 | 第26-27页 |
| 2.2.4 C2C12细胞培养及Ala-Gln浓度确定 | 第27-28页 |
| 2.2.5 不同营养补充对受损C2C12成肌细胞增殖能力的影响 | 第28页 |
| 2.2.6 Western blot检测C2C12细胞内MyoD1表达水平 | 第28-29页 |
| 2.2.7 C2C12成肌细胞内水溶性代谢物萃取 | 第29-30页 |
| 2.2.8 配制NMR样品与采集谱图 | 第30页 |
| 2.2.9 NMR数据预处理 | 第30-31页 |
| 2.2.10 NMR数据分析 | 第31-32页 |
| 2.3 结果 | 第32-55页 |
| 2.3.1 Ala-Gln表征 | 第32-34页 |
| 2.3.2 不同干预对C2C12成肌细胞增殖能力的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.3 不同干预对C2C12成肌细胞分化能力的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.4 NMR谱图及代谢物指认 | 第36-43页 |
| 2.3.5 模式识别分析 | 第43-46页 |
| 2.3.6 特征性代谢物的筛选和定量分析 | 第46-53页 |
| 2.3.6.1 NGG和Nor两组间特征性代谢物的筛选和定量分析 | 第48-49页 |
| 2.3.6.2 Ala和NGG两组间特征性代谢物的筛选和定量分析 | 第49-50页 |
| 2.3.6.3 Gln和NGG两组间特征性代谢物的筛选和定量分析 | 第50-52页 |
| 2.3.6.4 Ala-Gln和NGG两组间特征性代谢物的筛选和定量分析 | 第52-53页 |
| 2.3.7 代谢通路分析 | 第53-55页 |
| 2.4 讨论 | 第55-59页 |
| 2.4.1 Ala-Gln促进受损C2C12成肌细胞的增殖和分化能力 | 第55-56页 |
| 2.4.2 Ala-Gln促进受损C2C12成肌细胞的能量产生 | 第56-57页 |
| 2.4.3 Ala-Gln可维持受损C2C12成肌细胞的TCA回补途径 | 第57-58页 |
| 2.4.4 Ala-Gln可减弱受损C2C12成肌细胞的氧化应激 | 第58页 |
| 2.4.5 Ala-Gln提高受损C2C12成肌细胞的细胞膜稳定性 | 第58-59页 |
| 2.5 总结与展望 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-71页 |
| 在读期间发表的论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
