摘要 | 第8-10页 |
文献综述 | 第10-21页 |
1 党参作为药物的研发现状 | 第10-13页 |
1.1 党参的化学成分 | 第10-11页 |
1.2 党参中各化学成分的药理作用 | 第11-13页 |
1.2.1 党参多糖的药理作用 | 第11-12页 |
1.2.2 党参皂苷的药理作用 | 第12页 |
1.2.3 党参生物碱的药理作用 | 第12-13页 |
2 多糖的调节免疫作用机制研究进展 | 第13-18页 |
2.1 多糖对免疫器官的调节作用 | 第13页 |
2.2 多糖对免疫细胞的调节作用 | 第13-17页 |
2.2.1 多糖对T淋巴细胞的调节作用 | 第14页 |
2.2.2 多糖对B淋巴细胞的调节作用 | 第14-15页 |
2.2.3 多糖对巨噬细胞的调节作用 | 第15-16页 |
2.2.4 多糖对自然杀伤细胞的调节作用 | 第16页 |
2.2.5 多糖对红细胞的调节作用 | 第16-17页 |
2.3 多糖对补体系统的调节作用 | 第17页 |
2.4 多糖对粘膜免疫系统的调节作用 | 第17-18页 |
3 关于多糖制备工艺及剂型 | 第18-21页 |
3.1 制备工艺 | 第18-19页 |
3.2 剂型 | 第19-21页 |
前言 | 第21-23页 |
试验部分 | 第23-44页 |
1 试验材料 | 第23-24页 |
1.1 细胞株及试验动物 | 第23页 |
1.2 主要生化试剂 | 第23页 |
1.3 主要仪器 | 第23-24页 |
2 试验设计与方法 | 第24-28页 |
2.1 CPPS的制备及含量测定 | 第24-25页 |
2.1.1 CPPS的制备 | 第24页 |
2.1.2 CPPS的含量测定 | 第24-25页 |
2.2 CPPS对RAW 264.7细胞的免疫调节作用 | 第25-27页 |
2.2.1 细胞培养及分组 | 第25页 |
2.2.2 RAW 264.7细胞增殖的检测 | 第25页 |
2.2.3 TNF-α和IL-6的分泌水平的测定 | 第25-26页 |
2.2.4 TNF-α和L-6 mRNA表达的检测 | 第26页 |
2.2.5 NF-κB信号通路活化的检测 | 第26-27页 |
2.3 CPPS对肉仔鸡的免疫调节作用 | 第27-28页 |
2.3.1 试验动物及分组处理 | 第27页 |
2.3.2 鸡血清ND抗体效价的测定 | 第27-28页 |
2.3.3 免疫器官指数的测定 | 第28页 |
2.3.4 免疫球蛋白含量的测定 | 第28页 |
2.3.5 体重的测定 | 第28页 |
2.4 统计分析 | 第28页 |
3 结果 | 第28-40页 |
3.1 提取物中CPPS的含量 | 第28-29页 |
3.2 CPPS对RAW 264.7细胞的免疫调节作用 | 第29-33页 |
3.2.1 CPPS对RAW 264.7细胞增殖的影响 | 第29页 |
3.2.2 CPPS对RAW 264.7细胞分泌TNF-α和IL-6的影响 | 第29-30页 |
3.2.3 CPPS对TNF-α和IL-6 mRNA表达的影响 | 第30-32页 |
3.2.4 CPPS激活RAW 264.7细胞NF-κB信号通路 | 第32-33页 |
3.2.5 TNF-a、IL-6与NF-κB信号通路相关性分析 | 第33页 |
3.3 CPPS对肉仔鸡的免疫调节作用 | 第33-40页 |
3.3.1 CPPS对鸡血清抗体效价的影响 | 第33-34页 |
3.3.2 CPPS对免疫器官指数的影响 | 第34-37页 |
3.3.3 CPPS对免疫球蛋白含量的影响 | 第37-39页 |
3.3.4 CPPS对体重的影响 | 第39-40页 |
4 讨论 | 第40-43页 |
4.1 CPPS对RAW 264.7细胞的免疫调节作用 | 第40-42页 |
4.1.1 CPPS对RAW 264.7细胞的增殖作用 | 第40页 |
4.1.2 CPPS对TNF-α和IL-6的分泌及其mRNA表达的影响 | 第40-41页 |
4.1.3 NF-κB信号通路的激活 | 第41-42页 |
4.2 CPPS对肉仔鸡的免疫调节作用 | 第42-43页 |
4.2.1 CPPS对ND抗体效价的影响 | 第42页 |
4.2.2 CPPS对免疫球蛋白G的影响 | 第42页 |
4.2.3 CPPS对免疫器官指数及体重的影响 | 第42-43页 |
4.2.4 CPPS对分泌型免疫球蛋白A的影响 | 第43页 |
5 结论 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-50页 |
Abstract | 第50-51页 |
致谢 | 第52-53页 |
附件 | 第53-66页 |