| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 英文缩略语 | 第13-16页 |
| 综述 | 第16-23页 |
| 前言 | 第23-25页 |
| 技术路线图 | 第25-26页 |
| 第一部分 黄芪甲苷纳米乳眼用凝胶对实验性大鼠干性AMD的保护作用 | 第26-41页 |
| 1 实验材料 | 第26-27页 |
| 1.1 实验动物 | 第26页 |
| 1.2 药物 | 第26页 |
| 1.3 主要试剂 | 第26页 |
| 1.4 仪器 | 第26-27页 |
| 2 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.1 实验分组 | 第27页 |
| 2.2 实验性干性AMD模型的建立 | 第27页 |
| 2.3 给药剂量与方法 | 第27页 |
| 2.4 视网膜电图(electroretinograms,ERGs)的测定 | 第27-28页 |
| 2.5 HE染色观察视网膜组织病理学变化 | 第28-30页 |
| 2.6 统计学方法 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-37页 |
| 3.1 ERG检测结果 | 第30-35页 |
| 3.2 HE染色观察视网膜组织病理学改变 | 第35-37页 |
| 4 小结与讨论 | 第37-41页 |
| 4.1 动物模型的建立 | 第37-38页 |
| 4.2 黄芪甲苷纳米乳眼用凝胶给药载体及剂型的确立 | 第38-39页 |
| 4.3 黄芪甲苷纳米乳眼用凝胶对视网膜细胞形态功能学的改善作用 | 第39-41页 |
| 第二部分 黄芪甲苷纳米乳眼用凝胶对实验性干性AMD大鼠视网膜细胞凋亡的影响 | 第41-49页 |
| 1 实验材料 | 第41页 |
| 1.1 实验动物 | 第41页 |
| 1.2 药物 | 第41页 |
| 1.3 主要试剂 | 第41页 |
| 1.4 仪器 | 第41页 |
| 2 实验方法 | 第41-44页 |
| 2.1 实验分组 | 第41页 |
| 2.2 动物模型建立 | 第41-42页 |
| 2.3 给药剂量及方法 | 第42页 |
| 2.4 TUNEL法检测视网膜细胞的凋亡 | 第42-43页 |
| 2.5 免疫荧光法检测线粒体DNA氧化损伤情况 | 第43-44页 |
| 2.6 统计学方法 | 第44页 |
| 3 结果 | 第44-47页 |
| 3.1 TUNEL法检测视网膜细胞凋亡结果 | 第44-45页 |
| 3.2 免疫荧光法检测线粒体DNA损伤的修复 | 第45-47页 |
| 4 小结与讨论 | 第47-49页 |
| 4.1 黄芪甲苷纳米乳眼用凝胶抑制视网膜细胞凋亡 | 第47页 |
| 4.2 黄芪甲苷纳米乳眼用凝胶修复线粒体DNA损伤 | 第47-49页 |
| 第三部分 黄芪甲苷纳米乳眼用凝胶对Keap1 -Nrf2/ARE信号通路相关因子表达的影响 | 第49-60页 |
| 1 实验材料 | 第49-50页 |
| 1.1 实验动物 | 第49页 |
| 1.2 药物 | 第49页 |
| 1.3 主要试剂 | 第49页 |
| 1.4 仪器 | 第49-50页 |
| 2 实验方法 | 第50-53页 |
| 2.1 实验分组 | 第50页 |
| 2.2 动物模型建立 | 第50页 |
| 2.3 给药剂量及方法 | 第50页 |
| 2.4 Reverse Transcription PCR法测定视网膜组织中Keap1、Nrf2、HO-1、NQO1 mRNA的表达情况 | 第50-53页 |
| 2.5 统计学方法 | 第53页 |
| 3 结果 | 第53-58页 |
| 3.1 RT-PCR法检测视网膜组织中Keap1 mRNA相对表达量 | 第53-54页 |
| 3.2 RT-PCR法检测视网膜组织中Nrf2 mRNA相对表达量 | 第54-55页 |
| 3.3 RT-PCR法检测视网膜组织中HO-1 mRNA相对表达量 | 第55-57页 |
| 3.4 RT-PCR法检测视网膜组织中NQO1 mRNA相对表达量 | 第57-58页 |
| 4 小结与讨论 | 第58-60页 |
| 4.1 黄芪甲苷纳米乳眼用凝胶对实验性干性AMD大鼠保护作用机制 | 第58-60页 |
| 结论 | 第60-61页 |
| 创新性 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 个人简历 | 第73-74页 |
