中文摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-11页 |
中英文缩略词表 | 第12-13页 |
第一部分 理论研究 | 第13-17页 |
1 脊髓损伤的研究现状 | 第13-15页 |
1.1 西医药治疗现状 | 第13-14页 |
1.2 中医药与脊髓损伤 | 第14-15页 |
2 “脊髓康”的理论及研究基础 | 第15-16页 |
3 脊髓损伤与神经元凋亡相关分子 | 第16-17页 |
第二部分 实验研究 | 第17-45页 |
前言 | 第17页 |
实验一 大鼠脊髓神经元的体外分离、培养及鉴定 | 第17-23页 |
1 实验目的 | 第17页 |
2 实验动物 | 第17页 |
3 实验材料 | 第17-19页 |
4 实验方法 | 第19-20页 |
4.1 脊髓神经元的体外分离及原代培养 | 第19-20页 |
4.2 神经元的形态学观察及鉴定 | 第20页 |
5 结果 | 第20-23页 |
5.1 原代培养神经元细胞的生长特点及形态变化 | 第20-21页 |
5.2 神经元特异性烯醇化酶免疫荧光染色结果 | 第21-23页 |
实验二 神经元谷氨酸损伤模型的制备 | 第23-25页 |
1 实验目的 | 第23页 |
2 实验材料 | 第23页 |
3 实验方法 | 第23-24页 |
3.1 实验细胞 | 第23页 |
3.2 制备梯度浓度Glu-DMEM/F12造模液 | 第23页 |
3.3 实验分组及干预 | 第23页 |
3.4 指标检测 | 第23-24页 |
3.5 统计学处理 | 第24页 |
4 结果 | 第24-25页 |
实验三 “脊髓康”含药血清对脊髓损伤神经元凋亡的影响 | 第25-33页 |
1 实验目的 | 第25页 |
2 实验动物 | 第25页 |
3 实验材料 | 第25页 |
4 实验方法 | 第25-27页 |
4.1 实验细胞 | 第25页 |
4.2 实验药液及含药血清的制备 | 第25-26页 |
4.3 细胞接种及最佳干预时间筛选 | 第26页 |
4.4 “脊髓康”含药血清对脊髓损伤神经元凋亡的影响 | 第26-27页 |
4.5 统计学分析 | 第27页 |
5 结果 | 第27-33页 |
5.1 药物最佳干预时间筛选 | 第27-29页 |
5.2 干预后各组脊髓神经元的形态学变化 | 第29页 |
5.3 含药血清干预后各组脊髓神经元存活情况 | 第29-30页 |
5.4 含药血清干预后各组脊髓神经元凋亡变化 | 第30-33页 |
实验四 脊髓康含药血清影响脊髓神经元凋亡的机制初探 | 第33-45页 |
1 实验目的 | 第33页 |
2 实验材料 | 第33-35页 |
3 实验方法 | 第35-39页 |
3.1 实验细胞、接种及分组培养 | 第35页 |
3.2 研究脊髓康含药血清对大鼠脊髓神经元bcl-2及bax表达的影响 | 第35-38页 |
3.3 研究脊髓康含药血清对大鼠脊髓神经元Caspase 3表达的影响 | 第38页 |
3.4 统计学分析 | 第38-39页 |
4 结果 | 第39-45页 |
4.1 脊髓康含药血清对大鼠脊髓神经元bcl-2及bax蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
4.2 脊髓康含药血清对大鼠脊髓神经元bcl-2及bax mRNA表达的影响 | 第40-41页 |
4.3 脊髓康含药血清对大鼠脊髓神经元Caspase 3蛋白表达的影响 | 第41-42页 |
4.4 脊髓康含药血清对大鼠脊髓神经元Caspase 3 mRNA表达的影响 | 第42-45页 |
第三部分 讨论 | 第45-49页 |
1 体外培养脊髓神经元的影响因素 | 第45-46页 |
1.1 实验动物的选择 | 第45页 |
1.2 脊髓的分离及消化 | 第45页 |
1.3 脊髓神经元的纯化及鉴定 | 第45-46页 |
2 脊髓损伤神经元模型的建立及干预时间筛选 | 第46-47页 |
2.1 谷氨酸神经毒性与神经元损伤模型 | 第46页 |
2.2 造模后药物干预时间筛选 | 第46-47页 |
3 BCL-2、BAX及CASPASE 3与神经元凋亡的关系 | 第47页 |
3.1 bcl-2家族及bcl-2/bax比例与神经元凋亡 | 第47页 |
3.2 Caspase 3与神经元凋亡 | 第47页 |
4 脊髓康抗神经元凋亡分析 | 第47-49页 |
第四部分 全文总结与展望 | 第49-50页 |
1 主要研究结果 | 第49页 |
2 研究不足之处 | 第49页 |
3 有待继续探讨的问题 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-54页 |
攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |