中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
前言 | 第10-13页 |
1.小脑发育 | 第10-11页 |
2.小脑损伤后发育 | 第11页 |
3.颗粒神经元祖细胞亚群 | 第11-13页 |
材料与方法 | 第13-23页 |
一、实验材料 | 第13-15页 |
1.小鼠品系及来源 | 第13页 |
2.主要实验试剂 | 第13-14页 |
3.常用抗体 | 第14页 |
4.实验仪器 | 第14-15页 |
二、溶液配置 | 第15-17页 |
1.原代提取小鼠小脑GNPs所需试剂配置 | 第15页 |
2.免疫荧光常用溶液配置 | 第15-16页 |
3.Western Blot相关溶液配置 | 第16-17页 |
三、实验方法 | 第17-23页 |
1.小鼠小脑原代颗粒神经元前体细胞提取及培养 | 第17-19页 |
2.小脑显微切割 | 第19页 |
3.小鼠心脏灌流及脑组织剥离 | 第19-20页 |
4.免疫荧光染色 | 第20页 |
5.荧光定量qPCR检测 | 第20-22页 |
6.蛋白免疫印迹分析 | 第22-23页 |
实验结果 | 第23-33页 |
1. 发育中的小脑外颗粒层具有辐射损伤后的再生能力 | 第23-26页 |
1.1 小脑正常发育中外颗粒层的扩增 | 第23-24页 |
1.2 产后小脑辐射损伤后外颗粒层的修复 | 第24-26页 |
2. NEPS在小脑辐射损伤后参与EGL再生 | 第26-29页 |
2.1 NEPs具有辐射抗性 | 第26-28页 |
2.2 NEPs在EGL损伤后开始增殖 | 第28-29页 |
3. 辐照后SHH通路参与驱动NEPS的增殖与EGL的恢复 | 第29-33页 |
3.1 SHH在体外可以促进IR-NEPs的增殖 | 第29-30页 |
3.2 IR-NEPs具有活化的SHH通路 | 第30-31页 |
3.3 Vismodegib可以抑制小脑EGL辐射损伤后的修复 | 第31-33页 |
总结与讨论 | 第33-36页 |
参考文献 | 第36-39页 |
综述 | 第39-48页 |
参考文献 | 第45-48页 |
中英文缩略词对照表 | 第48-49页 |
攻读学位期间公开发表的论文 | 第49-50页 |
致谢 | 第50-52页 |