| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 第一章 前言 | 第13-23页 |
| 1.1 OA的介绍 | 第13-14页 |
| 1.2 MMPs与OA | 第14-15页 |
| 1.3 VEGF与OA | 第15-16页 |
| 1.4 沙利度胺与VEGF | 第16-17页 |
| 1.5 OA模型的选择 | 第17-18页 |
| 参考文献 | 第18-23页 |
| 第二章 实验材料 | 第23-27页 |
| 2.1 实验动物 | 第23页 |
| 2.2 试剂耗材 | 第23-25页 |
| 2.3 实验仪器 | 第25-27页 |
| 第三章 实验方法 | 第27-42页 |
| 3.1 试剂配制 | 第27-29页 |
| 3.2 动物造模 | 第29-30页 |
| 3.3 心脏穿刺 | 第30-31页 |
| 3.4 固定脱钙 | 第31页 |
| 3.5 脱水浸蜡 | 第31页 |
| 3.6 埋切片 | 第31-32页 |
| 3.7 苏木精-伊红染色 | 第32-33页 |
| 3.8 番红O快速绿染色 | 第33页 |
| 3.9 国际骨关节炎研究学会评分 | 第33-34页 |
| 3.10 逆转录聚合酶链反应 | 第34-37页 |
| 3.11 免疫组织化学染色 | 第37-39页 |
| 3.12 免疫荧光染色 | 第39-40页 |
| 3.13 酶联免疫吸附测定 | 第40-41页 |
| 3.14 统计处理 | 第41-42页 |
| 第四章 实验结果 | 第42-53页 |
| 4.1 沙利度胺处理可以延缓小鼠模型早期OA的进展 | 第42-46页 |
| 4.2 沙利度胺处理可以下调小鼠早期OA中VEGF和MMP-13的mRNA表达水平 | 第46-48页 |
| 4.3 沙利度胺处理抑制小鼠早期OA中VEGF的蛋白表达 | 第48-50页 |
| 4.4 沙利度胺处理降低小鼠早期OA中MMP-13的蛋白表达 | 第50-52页 |
| 4.5 沙利度胺处理降低小鼠模型早期OA的血清VEGF浓度 | 第52-53页 |
| 第五章 讨论 | 第53-60页 |
| 第六章 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-65页 |
| 综述 | 第65-76页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 附录 中英文缩略词对照表 | 第76-78页 |
| 成果 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
