中文摘要 | 第4-7页 |
abstract | 第7-9页 |
英文缩写 | 第13-14页 |
前言 | 第14-15页 |
第1章 文献综述 | 第15-24页 |
1.1 心肌梗死的研究进展 | 第15-16页 |
1.1.1 心肌梗死简介 | 第15页 |
1.1.2 心肌梗死与Ca~(2+)变化 | 第15-16页 |
1.2 CRT概述 | 第16-18页 |
1.2.1 CRT的简介 | 第16-17页 |
1.2.2 CRT的定位 | 第17-18页 |
1.3 DCS | 第18-20页 |
1.3.1 DCs的简介 | 第18-20页 |
1.3.2 DCs成熟与DAMPs | 第20页 |
1.4 MG53(TRIM72)概述 | 第20-24页 |
1.4.1 MG53简介 | 第20-21页 |
1.4.2 MG53与心脏病 | 第21-22页 |
1.4.3 MG53与ORAI1共同调控Ca~(2+)内流 | 第22页 |
1.4.4 MG53与乙酰化调控 | 第22-24页 |
第2章 实验材料与方法 | 第24-33页 |
2.1 实验动物 | 第24页 |
2.2 主要仪器设备 | 第24页 |
2.3 主要试剂 | 第24-25页 |
2.4 主要试剂的配制 | 第25-26页 |
2.5 分组及给药 | 第26-27页 |
2.6 大鼠心梗模型的建立以及取材 | 第27页 |
2.7 TTC法检测大鼠心肌梗死面积 | 第27-28页 |
2.8 HE染色 | 第28页 |
2.9 Westernblot检测法 | 第28-29页 |
2.10 FlowCytoMetry检测法 | 第29-31页 |
2.10.1 单细胞悬液的制备 | 第29-30页 |
2.10.2 抗体孵育与上机检测 | 第30-31页 |
2.10.2.1 直接标记法 | 第30页 |
2.10.2.2 间接标记法 | 第30页 |
2.10.2.3 Fluo-3 AM 标记 Ca~(2+) | 第30-31页 |
2.11 ELISA检测ORAI1、Casepase12及SERCA2a | 第31页 |
2.12 免疫荧光 | 第31-32页 |
2.13 统计学分析 | 第32-33页 |
第3章 实验结果 | 第33-56页 |
3.1 TSA对心肌梗死大鼠的作用 | 第33-36页 |
3.1.1 TSA对心肌梗死大鼠心肌梗死面积的影响 | 第33-34页 |
3.1.2 TSA对心肌梗死大鼠心肌组织形态的影响 | 第34页 |
3.1.3 TSA对大鼠心梗组织中成熟DCs数量的影响 | 第34-36页 |
3.2 TSA通过CRT对DCS成熟的影响及机制 | 第36-42页 |
3.2.1 TSA对大鼠心梗组织中总CRT的影响 | 第36页 |
3.2.2 TSA对大鼠心梗组织中膜表面CRT表达的影响 | 第36-37页 |
3.2.3 TSA对大鼠心梗组织中DCs功能的影响 | 第37-39页 |
3.2.4 内质网应激相关蛋白GRP78及Caspase12的表达变化 | 第39-40页 |
3.2.5 TSA对大鼠心梗组织中SERA2a含量变化的影响 | 第40-41页 |
3.2.6 TSA对大鼠心梗组织中胞内中Ca~(2+)的影响 | 第41-42页 |
3.3 TSA通过胞内Ca~(2+)对CRT的影响及机制 | 第42-51页 |
3.3.1 维拉帕米对大鼠心梗组织中胞内Ca~(2+)的影响 | 第42-44页 |
3.3.2 维拉帕米对心肌中内质网应激相关蛋白表达的影响 | 第44-47页 |
3.3.3 维拉帕米对大鼠心梗组织中细胞膜表面CRT表达的影响 | 第47-50页 |
3.3.4 维拉帕米对大鼠心梗组织中成熟DCs数量的影响 | 第50-51页 |
3.4 TSA影响大鼠心梗组织中胞内Ca~(2+)的机制 | 第51-56页 |
3.4.1 TSA对大鼠心梗组织中ORAI1的影响 | 第51页 |
3.4.2 TSA对大鼠心梗组织中MG53的影响 | 第51-52页 |
3.4.3 TSA对心梗组织中MG53与ORAI1共定位的影响 | 第52-53页 |
3.4.4 维拉帕米对大鼠心梗组织中ORAI1表达的影响 | 第53-54页 |
3.4.5 维拉帕米对大鼠心梗组织中MG53表达的影响 | 第54-56页 |
第4章 讨论 | 第56-60页 |
第5章 结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-65页 |
作者简介及在校期间所取得的科研成果 | 第65-66页 |
致谢 | 第66页 |