| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 第1章 文献综述 | 第8-14页 |
| 1.1 引言 | 第8页 |
| 1.2 植物细胞中ROS的作用和相关信号通路 | 第8-10页 |
| 1.2.1 植物细胞中ROS的产生与功能 | 第8-9页 |
| 1.2.2 植物细胞中的ROS诱导蛋白氧化 | 第9页 |
| 1.2.3 植物细胞中ROS的信号转导通路 | 第9-10页 |
| 1.3 植物应答H_2O_2的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.3.1 植物应答H_2O_2的分子生物学研究进展 | 第10页 |
| 1.3.2 植物应答H_2O_2的蛋白质组学研究进展 | 第10-11页 |
| 1.4 菠菜的研究进展 | 第11-12页 |
| 1.4.1 菠菜分子生物学研究进展 | 第11-12页 |
| 1.4.2 菠菜蛋白质组学研究进展 | 第12页 |
| 1.5 研究目的与意义 | 第12-14页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第14-20页 |
| 2.1 实验材料培养 | 第14页 |
| 2.2 菠菜叶绿体应答H_2O_2的生理学分析 | 第14-16页 |
| 2.2.1 叶绿体提取与叶绿素荧光参数测定 | 第14-15页 |
| 2.2.2 叶绿体抗氧化酶活性测定 | 第15-16页 |
| 2.2.3 叶绿体抗坏血酸与谷胱甘肽含量测定 | 第16页 |
| 2.3 菠菜叶绿体应答H_2O_2的蛋白质组学分析 | 第16-20页 |
| 2.3.1 菠菜叶绿体蛋白样品的制备 | 第16-17页 |
| 2.3.2 iodoTMT标记与蛋白质酶解消化 | 第17页 |
| 2.3.3 iTRAQ标记与多肽样品分级 | 第17-18页 |
| 2.3.4 液相色谱-质谱鉴定与质谱数据分析 | 第18页 |
| 2.3.5 差异蛋白质功能分类与聚类分析 | 第18-19页 |
| 2.3.6 差异蛋白质亚细胞定位预测 | 第19页 |
| 2.3.7 统计学分析 | 第19-20页 |
| 第3章 结果 | 第20-39页 |
| 3.1 菠菜叶绿体应答H_2O_2的抗氧化酶分析 | 第20-23页 |
| 3.2 菠菜叶绿体应答H_2O_2的抗坏血酸与谷胱甘肽含量分析 | 第23-24页 |
| 3.3 菠菜叶绿体应答H_2O_2蛋白质组学分析 | 第24-39页 |
| 3.3.1 胁迫应答蛋白质鉴定与功能分类 | 第24-25页 |
| 3.3.2 胁迫应答蛋白质聚类分析 | 第25-26页 |
| 3.3.3 胁迫应答蛋白质相互作用预测 | 第26-29页 |
| 3.3.4 叶绿体应答H_2O_2过程中参与光合作用的蛋白质 | 第29-32页 |
| 3.3.5 叶绿体应答H_2O_2过程中参与能量和碳代谢的蛋白质 | 第32-34页 |
| 3.3.6 叶绿体应答H_2O_2过程中参与胁迫防御的蛋白质 | 第34-35页 |
| 3.3.7 叶绿体应答H_2O_2过程中参与蛋白质命运的蛋白质 | 第35-36页 |
| 3.3.8 叶绿体应答H_2O_2过程中参与信号转导和膜与转运蛋白 | 第36-37页 |
| 3.3.9 叶绿体应答H_2O_2过程中未知功能的蛋白质 | 第37-39页 |
| 第4章 讨论 | 第39-46页 |
| 4.1 H_2O_2影响菠菜叶绿体的光合作用 | 第39-41页 |
| 4.2 H_2O_2影响菠菜叶绿体的能量和碳代谢过程 | 第41-43页 |
| 4.3 H_2O_2影响菠菜叶绿体ROS清除途径 | 第43-44页 |
| 4.4 H_2O_2影响菠菜叶绿体中蛋白质命运 | 第44-46页 |
| 第5章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 附录 | 第54-56页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
