| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-30页 |
| 1.1 四溴双酚A与重金属复合污染现状及其微生物修复 | 第15-20页 |
| 1.1.1 四溴双酚A的特性 | 第15-16页 |
| 1.1.2 四溴双酚A与重金属复合污染的现状 | 第16-17页 |
| 1.1.3 四溴双酚A的微生物降解和转化 | 第17-19页 |
| 1.1.4 重金属对四溴双酚A微生物降解和转化的影响 | 第19-20页 |
| 1.2 白腐真菌及其在微生物修复中的应用 | 第20-25页 |
| 1.2.1 白腐真菌对有机物的降解和转化 | 第21-22页 |
| 1.2.2 白腐真菌对重金属的吸附和转化 | 第22-23页 |
| 1.2.3 金属离子对白腐真菌生物降解和转化有机物的影响 | 第23-25页 |
| 1.3 环境污染微生物修复的蛋白组学研究 | 第25-26页 |
| 1.4 本论文的研究工作 | 第26-30页 |
| 1.4.1 研究的目的及意义 | 第26-27页 |
| 1.4.2 本研究的主要内容 | 第27-29页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第29页 |
| 1.4.4 创新点 | 第29-30页 |
| 第二章 P.sanguineus对TBBPA和Cr(VI)复合污染的去除 | 第30-47页 |
| 2.1 材料与设备 | 第30-32页 |
| 2.1.1 实验药品 | 第30页 |
| 2.1.2 主要实验试剂的配制 | 第30-31页 |
| 2.1.3 实验设备 | 第31页 |
| 2.1.4 实验菌种与培养基 | 第31-32页 |
| 2.2 实验方法 | 第32-36页 |
| 2.2.1 P.sanguineus孢子液的制备以及菌体的培养 | 第32页 |
| 2.2.2 pH对P.sanguineus去除TBBPA和Cr(VI)复合污染的影响 | 第32-33页 |
| 2.2.3 接种量对P.sanguineus去除TBBPA和Cr(VI)复合污染的影响 | 第33页 |
| 2.2.4 污染物初始浓度对P.sanguineus去除TBBPA和Cr(VI)复合污染的影响 | 第33页 |
| 2.2.5 胞外酶对TBBPA的降解以及Cr(VI)对胞外酶降解TBBPA的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.6 P450酶抑制剂对TBBPA降解的影响 | 第34页 |
| 2.2.7 TBBPA的分析和测定 | 第34页 |
| 2.2.8 Cr(VI)的测定方法 | 第34-35页 |
| 2.2.9 菌体胞外木质素降解酶活性的变化以及Cr(VI)对木质素降解酶活性的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.10 统计分析 | 第36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-45页 |
| 2.3.1 体系pH对P.sanguineus去除TBBPA和Cr(VI)复合污染的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.2 接种量对P.sanguineus去除TBBPA和Cr(VI)复合污染的影响 | 第37-38页 |
| 2.3.3 Cr(VI)初始浓度对P.sanguineus去除TBBPA和Cr(VI)复合污染的影响 | 第38-40页 |
| 2.3.4 TBBPA初始浓度对P.sanguineus去除TBBPA和Cr(VI)复合污染的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.5 胞外木质素降解酶活性的变化及胞外酶对TBBPA的降解 | 第41-43页 |
| 2.3.6 Cr(VI)对胞外木质素降解酶活性以及胞外酶降解TBBPA的影响 | 第43-44页 |
| 2.3.7 P450酶抑制剂对P.sanguineus去除TBBPA的影响 | 第44-45页 |
| 2.4 本章小结 | 第45-47页 |
| 第三章 TBBPA和Cr(VI)复合污染去除过程中P.sanguineus细胞特性的变化 | 第47-66页 |
| 3.1 材料与设备 | 第47-49页 |
| 3.1.1 试剂盒 | 第47页 |
| 3.1.2 实验药品 | 第47-48页 |
| 3.1.3 主要实验试剂的配制 | 第48页 |
| 3.1.4 实验设备 | 第48页 |
| 3.1.5 实验菌株和培养基 | 第48-49页 |
| 3.2 实验步骤 | 第49-51页 |
| 3.2.1 P.sanguineus的培养和污染物的投加 | 第49页 |
| 3.2.2 体系pH的测定 | 第49页 |
| 3.2.3 菌体生物量的测定 | 第49页 |
| 3.2.4 胞内蛋白含量的测定 | 第49-50页 |
| 3.2.5 细胞活性的测定 | 第50页 |
| 3.2.6 ATP酶(ATPase)活性的测定 | 第50页 |
| 3.2.7 细胞质膜完整性的测定 | 第50-51页 |
| 3.2.8 扫描电镜观察 | 第51页 |
| 3.2.9 透射电镜观察 | 第51页 |
| 3.2.10 统计分析 | 第51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-64页 |
| 3.3.1 TBBPA和Cr(VI)复合污染去除过程中体系pH的变化 | 第51-53页 |
| 3.3.2 TBBPA-Cr(VI)复合污染对P.sanguineus生长的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.3 TBBPA-Cr(VI)复合污染对P.sanguineus胞内蛋白的影响 | 第54-56页 |
| 3.3.4 TBBPA-Cr(VI)复合污染对P.sanguineus细胞活性的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.5 TBBPA-Cr(VI)复合污染对P.sanguineusATPase活性的影响 | 第57-61页 |
| 3.3.6 TBBPA-Cr(VI)复合污染对P.sanguineus质膜完整性的影响 | 第61-62页 |
| 3.3.7 不同污染体系中P.sanguineus细胞的SEM和TEM观察 | 第62-64页 |
| 3.4 本章小结 | 第64-66页 |
| 第四章 Cr(VI)诱导P.sanguineus氧化应激及凋亡的机制研究 | 第66-90页 |
| 4.1 材料与设备 | 第66-68页 |
| 4.1.1 试剂盒 | 第66页 |
| 4.1.2 实验药品 | 第66-67页 |
| 4.1.3 主要的实验试剂的配制 | 第67-68页 |
| 4.1.4 实验设备 | 第68页 |
| 4.1.5 实验菌株和培养基 | 第68页 |
| 4.2 实验方法 | 第68-74页 |
| 4.2.1 P.sanguineus的培养以及污染物的投加 | 第68页 |
| 4.2.2 SOD、CAT活性以及GSH、MDA含量的测定 | 第68-69页 |
| 4.2.3 胞内活性氧簇含量的测定 | 第69-70页 |
| 4.2.4 线粒体特性的检测 | 第70-71页 |
| 4.2.5 DNA断裂以及细胞核形态观察 | 第71-72页 |
| 4.2.6 细胞凋亡情况的观察 | 第72页 |
| 4.2.7 胞内Metacaspase活性测定 | 第72页 |
| 4.2.8 胞质中Ca2+和线粒体中Ca2+含量的测定 | 第72-73页 |
| 4.2.9 胞外K+流速测定 | 第73-74页 |
| 4.2.10 统计分析 | 第74页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第74-89页 |
| 4.3.1 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus胞内ROS含量的变化 | 第74-76页 |
| 4.3.2 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus胞内SOD、CAT活性以及GSH含量的变化 | 第76-79页 |
| 4.3.3 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus胞内MDA含量的变化 | 第79页 |
| 4.3.4 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus细胞的凋亡特征 | 第79-81页 |
| 4.3.5 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus线粒体特性的变化 | 第81-83页 |
| 4.3.6 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus胞内Metacaspase的激活 | 第83-84页 |
| 4.3.7 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus细胞DNA断裂以及细胞核变化 | 第84-86页 |
| 4.3.8 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus胞质和线粒体中Ca2+含量的变化 | 第86-88页 |
| 4.3.9 Cr(VI)胁迫下P.sanguineus胞外K+流速的变化 | 第88-89页 |
| 4.4 本章小结 | 第89-90页 |
| 第五章 P.sanguineus在TBBPA-Cr(VI)胁迫下差异蛋白功能分析 | 第90-111页 |
| 5.1 材料与设备 | 第90-91页 |
| 5.1.1 实验试剂盒及药品 | 第90页 |
| 5.1.2 主要实验试剂的成分 | 第90-91页 |
| 5.1.3 实验设备 | 第91页 |
| 5.2 实验步骤 | 第91-95页 |
| 5.2.1 P.sanguineus的培养以及污染物的投加 | 第91页 |
| 5.2.2 菌体的研磨 | 第91-92页 |
| 5.2.3 蛋白质的提取及纯化 | 第92页 |
| 5.2.4 蛋白质的定量 | 第92页 |
| 5.2.5 蛋白酶解以及iTRAQ试剂标记 | 第92-93页 |
| 5.2.6 第一维高pH-RP液相分离 | 第93-94页 |
| 5.2.7 第二维反相液质联用RPLC-MS分析 | 第94页 |
| 5.2.8 数据检索 | 第94-95页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第95-109页 |
| 5.3.1 TBBPA-Cr(VI)单一和复合污染体系中菌体细胞的全蛋白表达 | 第95-96页 |
| 5.3.2 TBBPA-Cr(VI)单一和复合污染体系中菌体细胞差异蛋白功能分类 | 第96-98页 |
| 5.3.3 TBBPA-Cr(VI)单一和复合污染体系中菌体细胞差异蛋白功能分析 | 第98-109页 |
| 5.4 本章小结 | 第109-111页 |
| 结论与展望 | 第111-114页 |
| 一、结论 | 第111-112页 |
| 二、展望 | 第112-114页 |
| 参考文献 | 第114-133页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第133-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 附件 | 第137页 |
