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抗肿瘤肽的优化设计及抗肿瘤机制研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
符号说明第14-15页
第一章 绪论第15-29页
    1.1 抗肿瘤肽与癌症第15-16页
    1.2 抗肿瘤肽的结构特点第16-17页
    1.3 抗肿瘤肽对肿瘤细胞的选择性第17-18页
    1.4 抗肿瘤肽的作用机制第18-25页
        1.4.1 细胞膜裂解机制第19-23页
        1.4.2 细胞器膜裂解机制第23-24页
        1.4.3 非膜裂解机制第24-25页
    1.5 检测多肽抗肿瘤活性及膜裂解能力的常用方法第25-26页
        1.5.1 MTT实验第25页
        1.5.2 乳酸脱氢酶释放实验第25页
        1.5.3 死活细胞染色实验第25-26页
        1.5.4 钙黄绿素释放实验第26页
        1.5.5 多肽引起的膜表面张力变化第26页
    1.6 检测细胞凋亡及凋亡机制的常用方法第26-28页
        1.6.1 Annexin V/PI法检测细胞凋亡第26-27页
        1.6.2 Western blot法检测Caspase-3的活性第27页
        1.6.3 Caspase-3活性试剂盒检测Caspase-3的活性第27页
        1.6.4 线粒体电势的检测第27-28页
    1.7 论文选题意义及目的第28-29页
第二章 实验部分第29-45页
    2.1 实验仪器及材料第29-31页
        2.1.1 实验仪器第29-30页
        2.1.2 实验药品第30-31页
    2.2 实验方法第31-45页
        2.2.1 合成和纯化目标多肽第31-33页
        2.2.2 多肽Zeta电位,粒径测定及二级结构观察第33页
        2.2.3 细胞培养与传代第33-35页
        2.2.4 肿瘤细胞增殖抑制(MTT)实验第35页
        2.2.5 乳酸脱氢酶释放实验第35-36页
        2.2.6 死/活细胞染色实验第36页
        2.2.7 多肽对模拟膜裂解能力检测第36-37页
        2.2.8 多肽引起的膜表面张力变化第37-38页
        2.2.9 Annexin V/PI法检测细胞凋亡第38-39页
        2.2.10 利用Western blot检测Caspase-3第39-41页
        2.2.11 利用分光光度法检测Caspase-3活性第41页
        2.2.12 多肽ZXR-1穿膜现象的观察及机理研究第41-42页
        2.2.13 线粒体跨膜电位检测第42-45页
第三章 实验结果与讨论第45-65页
    3.1 抗肿瘤肽多肽ZXR-1和ZXR-2的合成与纯化第45-48页
        3.1.1 多肽的合成第45页
        3.1.2 多肽的分析纯化第45-46页
        3.1.3 多肽分子量鉴定第46-47页
        3.1.4 多肽的大量制备第47-48页
    3.2 多肽的粒径、电位及二级结构的观察第48-50页
    3.3 多肽对肿瘤细胞的增殖抑制能力第50-52页
    3.4 多肽对细胞膜裂解能力的观察第52-54页
        3.4.1 乳酸脱氢酶实验第52-53页
        3.4.2 多肽引起的细胞形态的变化第53-54页
    3.5 多肽对模拟膜裂解能力的观察第54-57页
        3.5.1 钙黄绿素释放实验第54-55页
        3.5.2 多肽导致的模拟膜表面压力的变化第55-57页
    3.6 多肽导致细胞凋亡的检测第57-60页
        3.6.1 Annexin V/PI法检测细胞凋亡第57-58页
        3.6.2 Western blot法检测细胞凋亡第58-59页
        3.6.3 Caspase-3活性试剂盒检测细胞凋亡第59-60页
    3.7 多肽导致细胞凋亡的机制研究第60-65页
        3.7.1 ZXR-1穿膜能力的检测第60-62页
        3.7.2 ZXR-1引起的细胞线粒体电势的变化第62-63页
        3.7.3 ZXR-1穿膜行为的温度依赖性第63-65页
第四章 结论与展望第65-67页
参考文献第67-71页
致谢第71-73页
研究成果及发表论文第73-75页
作者和导师介绍第75-76页
硕士研究生学位论文答辩委员会决议书第76-77页

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